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酵母质粒小量抽提试剂盒厂家价格
点击次数：419发布时间：2016/3/1 14:10:38
更新日期：2016/7/2 9:08:49
所 在 地：中国大陆
产品型号：YT004
优质供应
详细内容
名称：酵母质粒小量抽提试剂盒厂家价格
规格：50次
编号：YT004
英文名：Yeast Plasmid Mini Preparation Kit
品牌：百奥莱博
产地：国产|进口
酵母质粒小量提取试剂盒是一种使用破壁酶(Lyticase)消化去除酵母细胞壁，然后采用一种新型的酵母质粒纯化柱实现从酵母细胞中进行小量质粒快速抽提的试剂盒。
无需酚抽提，无需酒精沉淀，12个样品只需约1-1.5小时即可完成。
试剂盒提供了破壁酶(Lyticase)，酵母收集后，加入Lyticase消化去除细胞壁，接着采用传统碱裂法裂解细胞，然后将获得的上清液转移至结合柱结合DNA，经过离心快速洗涤，*后用洗脱液洗脱出酵母质粒DNA。
由于采用了高浓度的破壁酶，无需再使用玻璃珠，可以避免因为玻璃珠的机械作用带来的酵母基因组DNA污染。
每个质粒纯化柱可以结合的质粒量的上限约为20微克。质粒DNA的产量依赖于酵母携带质粒的拷贝数，酵母菌株以及生长条件。通常酵母质粒的拷贝数较低，1.5-5ml培养过夜的酵母抽提获得的质粒DNA量约为1-3微克左右。高拷贝酵母质粒抽提时的得率会大大提高。抽提所得质粒的量与酵母培养浓度、质粒拷贝数、酵母品系等因素有关。
使用本试剂盒抽提得到的酵母质粒DNA可用于各种常规分子生物学实验，如转化、PCR、基于PCR的突变、体外转录、酶切、测序、文库筛选等。
保存条件：
D0029-8需-20℃保存，其余室温保存，一年有效。D0029-8为粉末，短时间4℃存放不影响其活性。D0029-8配制成Lyticase溶液后4℃可以保存1个月，-20℃可以保存6个月。
注意事项：
次使用前把试剂盒提供的RNaseA全部加到溶液Ⅰ(悬浮液)中，混匀，并在瓶上做好标记。加入RNaseA后4℃存放。
次使用前在每瓶溶液Ⅳ(洗涤液)中加入27ml无水乙醇，混匀，并在瓶上做好标记。
次使用前吸取1mlLyticase配制液到Lyticase粉末中，完全溶解后即为Lyticase溶液。配制好的Lyticase溶液4℃可以保存1个月，-20℃可以保存6个月。如需-20℃保存，能适当分装。Lyticase溶液配制后或冻存后再溶解可能会出现轻微混浊，属正常现象，请混匀后使用。
温度较低时，溶液Ⅱ和溶液Ⅲ可能会有沉淀产生。使用前必须检查一遍。如有沉淀，37℃水浴加热溶解，混匀后使用。溶液Ⅱ请勿过分剧烈混匀，否则会产生大量气泡。
溶液Ⅱ使用完后，一定要盖紧瓶盖，防止被空气中二氧化碳酸化。
溶液II有强碱性，溶液Ⅱ、溶液Ⅲ和Lyticase对人体都有刺激性，操作时请小心，并注意适当防护。
本试剂盒所有操作均在室温进行，操作时无需冰浴。所有离心也均在室温进行。
废液收集管在一次抽提中需多次使用，切勿中途丢弃。
使用说明：
1.取培养过夜的酵母1.5毫升，5000g离心1分钟收集酵母沉淀，弃上清。再重复一次，每管共收集3毫升培养过夜的酵母。再在离心机快速离心一下(5000g离心1-2秒)，用移液器小心吸尽残余液体。
通常酵母宜30°C培养过夜(16-24小时左右)。建议5000g(～5000-6000rpm)室温离心1分钟，如沉淀不充分则适当延长离心时间。时间过长或离心速度过快会使沉淀过于紧密，不利于后续加入溶液I后充分重悬沉淀。直接倒掉上清，再倒入约1.5毫升酵母液并重复上述的离心操作，然后直接倒掉上清 ，再在离心机快速离心一下(5000g1-2秒)，用移液器小心吸尽残余液体。残余液体必须吸尽，否则可能会干扰后续的酶解反应。如果酵母密度明显偏低，可考虑使用更多酵母液，再重复上述操作1-2次。所用酵母量一般不宜超过5ml。过量的酵母会导致后续的酶解和碱裂解不充分。
2.每管加入100微升酶解缓冲液，重悬酵母沉淀。确保沉淀完全散开，无可见酵母团块。可以通过剧烈Vortex来重悬沉淀。
3.加入20微升配制好的Lyticase溶液，充分混匀，30℃水平摇床200-250rpm孵育0.5-1小时。注意：根据酵母菌株和酵母细胞数量的不同，酶解的孵育时间可进行适当调整。当酵母用量较大时，酶解的孵育时间需延长。孵育时间延长到2-3小时通常不会对质粒抽提带来负面影响。
4.1500g(～3000-4000rpm)离心10钟，弃上清，收集沉淀。直接倒掉上清，然后倒置于吸水纸上(可用普通草纸)，使液体流尽。也可在直接倒掉上清后再在离心机内甩一下，用移液器吸尽残留液体。不同离心机因离心半价的不同g和rpm的换算值有所不同。
5.每管加入250微升溶液I，重悬酵母沉淀。确保沉淀完全散开，无可见酵母团块。确认溶液I中已经添加了RNaseA。由于此时酵母细胞壁已经去除，重悬操作要温和，不宜剧烈振
荡，否则会容易导致基因组DNA的污染。但同时必须保证沉淀充分散开，即必须确保酵母细胞充分分散到溶液中。
6.每管加入250微升溶液II，轻轻颠倒离心管4-6次，使菌体完全裂解，溶液透明。切勿vortex！vortex或其它剧烈操作会导致基因组DNA断裂，易导致*终所得质粒被基因组DNA污染。遇到有少量团块或絮状物产生的情况，可以增加颠倒次数3-5次，再室温放置2-3分钟，但总裂解时间不可超过5分钟。
7.每管加入350微升溶液III，随即颠倒离心管4-6次混匀，可见白色絮状物产生。切勿vortex！颠倒次数也不宜过多，否则易导致*终所得质粒的质量下降。
8.速(13,000rpm左右)室温离心10分钟。离心后会产生白色沉淀。离心时准备好下一步需使用的质粒纯化柱，废液收集管，并在纯化柱上做好标记。
9.将上一步骤离心后的上清倒入或吸入到质粒纯化柱内。速离心30-60秒，倒弃收集管内液体。质粒倒入质粒纯化柱后，可以不用等待，直接离心。倒弃收集管内的液体后，保留收集管继续使用。
10.在质粒纯化柱内加入750微升溶液IV，速离心30-60秒，洗去杂质，倒弃收集管内液体。加入溶液IV后可以不用等待，直接离心。倒弃收集管内的液体后，保留收集管继续使用。
11.速再离心1分钟，除去残留液体并使痕量乙醇完全挥发。注意：倒弃收集管内液体后再离心，才能彻底去除微量的溶液IV。微量的溶液IV会影响质粒的质量。
12.将质粒纯化柱置于1.5毫升离心管上，加入50微升溶液V至管内柱面上，放置1分钟。
溶液V需要直接加至管内柱面中央，使液体被纯化柱吸收。如果不慎将溶液V沾在管壁上，一定要震动管子，使液体滑落到管底，以便被纯化柱吸收。也可以用重蒸水或MiliQ级纯水替代溶液V，但是水的pH应不小于6.5。溶液V加入后放置时间稍长，对于增加质粒产量会略有帮助。
13.速离心1分钟，所得液体即为高纯度酵母质粒。.jpg)
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