PCR引物合成服务
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详细内容
合成设备:进口Dr.Oligo-192系列合成仪
生产能力强大:生产通量达20万碱基/天
纯化方式多样:脱盐(DSL)OPC、PAGE、F-PAGE及HPLC等四种纯化方式
产品质量优质:以LC-MS质谱仪及HPLC色谱仪检测为质控依托
合成速度快捷:全面保证合成速度
2、服务流程
联系销售 → 签订合同 → 订单确认 → 引物合成 → 发货
3、温馨提示
1.如未注明合成规模,我们将按普通引物2OD、page长链引物1OD的量合成,单管包装;修饰及标记引物将按相应长度的引物的量合成;
2.修饰或标记引物的价格计算方式是:总价=常规引物的价格+修饰或标记的价格;单条引物<10base(包括10base)的引物请询价;
3.简并引物按常规引物收费;
4.需要高OD值的引物请询价;
5.如果需要周六或周日送货,请与当地销售员联系。
引物合成服务,随机引物合成,PCR引物合成服务
Q1:引物如何溶解?
合成报告单中的Note给出了每OD引物稀释为100μM(即100pmol/ul)浓度的加水量,您可以根椐您的实验需要加入适量的无核酸酶的双蒸水(PH>8.0)或TE缓冲液(PH 7.5-8.0),开启瓶盖溶解之前在3000-4000转/分钟的转速下离心1分钟,防止开盖时引物散失。
1.引物管上标有1OD 相当于多少nmol 的计算结果,进行稀释时的引物加水量可以按以下公式计算:
稀释成100μM (100pmol/ul) 1OD 需加水量(ul)=1OD相当于nmol 数×10
2.液体引物再稀释可用下列公式:
稀释引物要达到的浓度(pmol/ul)=母液浓度(pmol/ul)×汲取母液的体积(ul)÷[汲取母液的体积(ul)+加水量(ul)]
Q2:引物如何保存?
没有溶解的引物非常稳定,可以在-20℃下保存至少1年,溶解好的引物可以事先稀释为100μmoL/L的储存液,分装数管保存于-20℃冰箱,可以保存至少半年以上(反复多次冻融会降低使用寿命)。使用前,将浓溶液稀释成工作液后进行实验。
常用荧光染料参数:
染料 | Excitation(激发波长,nm) | Emission(发射波长,nm) | 颜色 |
6-FAM | 494 | 518 | Yellow-Green |
Flurescein | 495 | 520 | |
TET | 521 | 536 | |
JOE | 520 | 548 | Yellow |
HEX | 533 | 559 | |
CY3 | 550 | 570 | Yellow-Orange |
TAMRA | 544 | 576 | |
ROX | 576 | 601 | Orange |
CY5 | 650 | 670 | Red |
用引物列表:
引物合成服务,随机引物合成,PCR引物合成服务
引物 | 序列 | 包装 |
Random Sexamer | 5’d(NNN NNN)3’ | 1.0 OD |
Random Nonamer | 5’d(NNN NNN NNN)3’ | 1.0 OD |
Random Decamer | 5’d(NNN NNN NNN N)3’ | 1.0 OD |
M13/pUC Sequencing Primer (-20) | 5’d(GTA AAA CGA CGG CCA GT)3’ | 1.0 OD |
M13/pUC Sequencing Primer (-40) | 5’d(GTT TTC CCA GTC ACG AC)3’ | 1.0 OD |
M13/pUC Sequencing Primer (-47) | 5’d(CGC CAG GGT TTT CCC AGT CAC GAC)3’ | 1.0 OD |
M13/pUC Reverse Sequencing Primer | 5’d(AAC AGC TAT GAC CAT G)3’ | 1.0 OD |
M13/pUC Reverse Sequencing Primer | 5’d(CAG GAA ACA GCT ATG AC)3’ | 1.0 OD |
M13/pUC Reverse Sequencing Primer (-48) | 5’d(AGC GGA TAA CAA TTT CAC ACA GGA)3’ | 1.0 OD |
SP6 Promotor Primer | 5’d(CAT ACG ATT TAG GTG ACA CTA TAG)3’ | 1.0 OD |
T7 Pomotor Primer | 5’d(TAA TAC GAC TCA CTA TAG GGC GA)3’ | 1.0 OD |
T3 Promotor Primer | 5’d(ATT AAC CCT CAC TAA AGG GA)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)10 | 5’(TTT TTT TTT T)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)12 | 5’(TTT TTT TTT TTT)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)14 | 5’(TTT TTT TTT TTT TT)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)16 | 5’(TTT TTT TTT TTT TTT T)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)18 | 5’(TTT TTT TTT TTT TTT TTT)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(A)18 | 5’d(AAA AAA AAA AAA AAA AAA)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(C)18 | 5’d(CCC CCC CCC CCC CCC CCC)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(G)18 | 5’d(GGG GGG GGG GGG GGG GGG)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)9A | 5’(TTT TTT TTTA)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)11A | 5’(TTT TTT TTT TTA)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)13A | 5’(TTT TTT TTT TTT TA)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)15A | 5’(TTT TTT TTT TTT TTTA)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)17A | 5’(TTT TTT TTT TTT TTT TTA)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)9G | 5’(TTT TTT TTTG)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)11G | 5’(TTT TTT TTT TTG)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)13G | 5’(TTT TTT TTT TTT TG)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)15G | 5’(TTT TTT TTT TTT TTTG)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)17G | 5’(TTT TTT TTT TTT TTT TTG)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)9C | 5’(TTT TTT TTTC)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)11C | 5’(TTT TTT TTT TTC)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)13C | 5’(TTT TTT TTT TTT TC)3’ | 1.0 OD |
Oligo d(T)15C | 5’(TTT TTT TTT TTT TTTC)3 | 1.0 OD |
Oligo d(T)17C | 5’(TTT TTT TTT TTT TTT TTC)3 | 1.0 OD |