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技术文章
为确定有无支原体污染该做哪些检测?
点击次数:116 发布时间:2024/9/20 9:46:37
为确定有无支原体污染可做如下检测:
1.相差显微境检测
将细胞按种于事先放置于培养瓶内的盖玻片上,24h后取出,用相差油镜观察,支原体呈暗色微小颗粒位于细胞表面和细胞之间。
2.荧光染色法
荧光染色用能与DNA特异性结合的荧光染料Hoechst 33258,可使支原体内含有的DNA着色,染色后用荧光显微镜观察。具体方法如下:首先将细胞接种盖玻片上,在细胞未长满前取出玻片,用不合酚红的 Hanks液漂洗一下,用l: 3醋酸甲酵固定10Min,然后用生理盐水漂洗,置于用生理盐水配浓度为50pg/ml的Hoechst 33258中染色10min。染色后用蒸溜水洗1-2min,向细胞面滴加pH5.5磷酸缓冲液数滴,然后置荧光显微镜下观察。镜下支原体为散在于细胞同围或附于细胞膜表面的亮绿色小点。
3.电镜检查
用扫描电镜方法简便快速,也可以利用透射电镜。
4.DNA分子条文检查或支原体培养等方法
检出率高,但方法较为复杂。
支原体是一类缺乏细胞壁的原核细胞型微生物,大小一般在0.3-0.5μm之间,呈高度多形性,有球形、杆形、丝状、分枝状等多种形态。它不同于细胞,也不同于病毒。支原体用普通染色法不易着色,用姬姆萨染色很浅,革兰染色为阴性。支原体可在鸡胚绒毛尿囊膜上或细胞培养中生长,营养要求比细菌高。
支原体污染的来源包括工作环境的污染、操作者本身的污染(一些支原体在人体是正常菌群)、培养的污染、污染支原体的细胞造成的交叉污染、实验器材带来的污染和用来制备细胞的原始组织或器官的污染。细胞培养工作中,主要从以下几个方面来预防支原体的污染:控制环境污染;严格实验操作;细胞培养和器材要保证无菌;在细胞培养中加入适量的抗生素。
1、支原体检测
荧光定量PCR法(qPCR):是在常规PCR基础上,将『针对支原体特异性保守序列的探针』做荧光标记,使PCR扩增后的产物带有荧光,利用荧光信号的变化和配套软件,进行DNA扩增反应的实时监测,简称qPCR。
优点:①灵敏度高、特异性强。
②时间短,2-3小时出结果。
③检测结果可定量。
④操作简便。
缺点:①对于已做支原体灭活处理的样品,由于支原体DNA仍旧存在其中,PCR结果会出现假阳性。(可用培养法做补充验证)
②不同厂家生产的试剂盒质量差异巨大(由于引物及内在设计不同),需谨慎选择,尽量在专业人员推荐指导下使用。
德国MB公司生产的支原体qPCR检测试剂盒(均为探针法检测),依据操作步骤的细微差别,
分『经典法』和『一步法』两种。
2、环境空间消毒方案
试验台、超净台、培养箱、液氮罐、移液器、门把手、电话等细胞培养环境
被支原体污染,可引起细胞的污染。应定期对工作区域进行消毒。
德国MB生产的Mycoplasma-offTM喷雾剂,或湿巾擦拭 5-10分钟清除,对支原体、细菌、真菌、霉菌、孢子祛除确切有 效。无残留, 无腐蚀, 无致癌性,操作简单方便。
qPCR法介绍:
荧光定量PCR法(qPCR):是在常规PCR基础上,将『针对支原体特异性保守序列的探针』做荧光标记,使PCR扩增后的产物带有荧光,利用荧光信号的变化和配套软件,进行DNA扩增反应的实时监测,简称qPCR。
优点:①灵敏度高、特异性强。
②时间短,2-3小时出结果。
③检测结果可定量。
④操作简便。
缺点:①对于已做支原体灭活处理的样品,由于支原体DNA仍旧存在其中,PCR结果会出现假阳性。(可用培养法做补充验证)
②不同厂家生产的试剂盒质量差异巨大(由于引物及内在设计不同),需谨慎选择,尽量在专业人员推荐指导下使用。
原创作者:北京缔一生物科技有限公司