常见琼脂糖凝胶电泳错误

1. 使用水代替凝胶缓冲液或电泳缓冲液
琼脂糖凝胶配制和电泳通常使用TAE或TBE缓冲液进行。 如果您使用水进行凝胶配制和跑电泳，您的凝胶将在电泳时很快融化。 TAE、TBE和水都是透明的溶液；因此，在配制时请检查容器的标签。

2. 使用了错误浓度的琼脂糖
DNA凝胶电泳所需的标准琼脂糖浓度为1.0%。浓度越高，小条带的分辨率越高；反之，琼脂糖浓度越低，大分子量条带的分辨率和分离程度越高。 如果使用了错误浓度的琼脂糖凝胶，就很难确定DNA条带的可靠性。 当使用低百分比浓度琼脂糖凝胶时要小心；它们往往较软，更容易破损。

3. 颠倒了电泳槽与电源连接线的方向
这是很容易犯的错误，但是如果你不小心颠倒了电泳槽与电源连接线的方向，结果将会非常令人沮丧。 因为样本会向相反方向移动，而且由于上样孔与凝胶的末端很近，您会丢失所有的样本。 开始您的电泳后确保DNA样本以正确的方向进入凝胶；如果您看到您的条带向错误的方向移动，请颠倒电源线的方向。

琼脂糖凝胶中实现更高分辨率的5种方法

1. 什么是适合于您的琼脂糖凝胶电泳的正确缓冲液？

进行DNA琼脂糖凝胶电泳所需的缓冲液类型，主要取决于DNA片段大小和电泳后的应用。 进行琼脂糖凝胶电泳常见的两种缓冲液是Tris-乙酸EDTA缓冲液（TAE）和Tris-硼酸EDTA缓冲液（TBE）。 因为两种缓冲液的pH值都接近中性，所以缓冲液中的DNA都带净负电荷并向凝胶装置正(+)方向移动。

对于小片段DNA (<1000 bp)，如果没有计划从凝胶中回收DNA，那么推荐使用1x TBE缓冲液。 TBE溶液具有高离子强度和缓冲能力。 TAE缓冲液，结合低电场强度（1–2 V/cm），适于分离大DNA（12–15 kb）。 TAE缓冲液与琼脂糖相互作用，相比较TBE缓冲液中的琼脂糖凝胶，会产生更低的电渗透，更大的表面孔经，和更低的电场强度，可降低大DNA的smear现象。

2. 为了获得好的分辨率您需要的DNA上样量是多少？

DNA样本量可以是各种各样的，关键是您正在分离的DNA条带的DNA含量。 小可能被检测的DNA的量依赖于所使用的染色方法（例如，使用SYBR Safe DNA凝胶染色可以检测出 3 ng的DNA。 个清晰且界限分明的条带中DNA大量为100 ng。

3. 凝胶配制如何影响条带分辨率？

推荐的琼脂糖凝胶厚度为3-4 mm；厚度超过5mm的凝胶会产生模糊的条带和更高的染色背景。与此类似，覆盖在电泳装置中凝胶上的电泳缓冲液厚度为3-5mm。 缓冲液太多会降低DNA迁移率并造成条带变形。

梳齿的厚度也很重要，它会显著影响分辨率。 薄梳(1 mm)会给出界限清晰的条带，而厚梳会产生厚条带，导致分辨率降低。 梳齿应充分清洗以去掉可能的残留物，否则可能会在泳道内产生波浪线。 此外，在去除梳齿要先加入缓冲液，以减少琼脂糖孔附近的撕裂。

4. 凝胶类型影响条带分辨率吗？

根据DNA的应用和大小，琼脂糖类型会影响DNA分辨率。 凝胶强度，凝胶融解温度，和电渗透是选择合适琼脂糖时的重要因素。

5. 您如何选择琼脂糖凝胶电泳运行环境？

推荐的凝胶电泳装置内的电压是4–10 V/cm（正和负之间的距离，不是凝胶长度）。 如果电压太低，迁移率会降低，而且条带会因扩散而变宽。 如果电压太高，条带分辨率会降低，这主要是由于凝胶过热引起的。

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