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大鼠小肠粘膜组织提取物注意事项
大鼠小肠粘膜组织提取物注意事项:
1. 接收到大鼠小肠粘膜组织提取物图片,肉眼观察细胞培养基颜色,显微镜观察细胞生长情况,并对细胞进行不同倍数拍照(建议收到时的培养瓶拍一张照片,显微镜拍收到时的细胞00X,200X各一张)。
2.用75%的酒精消毒(建议配置75%的酒精的水是灭菌过的)。
3.严格无菌操作,打开细胞培养瓶。
4.将细胞培养瓶内的培养基用吸管*吸出(严禁直接倾倒),放入另一无菌容器中(建议换新的培养基培养细胞)。
5.用PBS 2-3ml/次轻轻洗细胞表面,洗3-4次遍,加入0.05%-EDTA-.5ml,显微镜下观察细胞变圆,轻轻拍打培养瓶直到细胞脱落,加入终止液终止。
6.000rpm,5min离心,重悬细胞。
7.换新的细胞培养瓶,37℃,5%CO2培养。 8. 在整个操作过程中,务必佩戴好实验服、手套和护目镜,以防生物危害及化学试剂溅伤。注意定期更换手套,避免交叉污染。
9. 细胞培养环境的稳定性至关重要。确保培养箱内的温度、湿度及CO?浓度维持在设定范围内,并定期检查校准。
10. 每次操作前后,均需对工作台面进行清洁与消毒,推荐使用无刺激性、广谱杀菌的消毒剂,并确保消毒剂完全挥发后再进行下一步操作。
11. 记录每一步操作的时间、培养基更换情况、细胞生长状态及任何异常情况,这些详细记录对于后续实验分析及问题排查至关重要。
12. 若实验过程中遇到细胞污染、生长异常等问题,应立即停止实验,并对相关物品进行无害化处理,同时追溯污染源,采取相应措施防止再次发生。
13. 提取物存储应置于-80℃冰箱中,避免反复冻融,以确保其生物活性及实验结果的准确性。取用时,快速融化并迅速转移至培养环境中,减少暴露时间。
原创作者:上海贸发展览服务有限公司