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流式细胞术常见问题问答

点击次数:953发布时间:2018/11/5

 流式细胞技术测定细胞内游离钙浓度为何要使用氯化钙.在文献及其他专业中都有测定游离钙的方法,具体如下:

 
(1) 钙荧光探针负载;
 
(2)随机测定每管细胞悬液样品(以下简称样品)的单个细胞的荧光强度,记为F值。
 
(3)加入10%Triton X 100,(破膜用);加入1 mmol/L氯化钙,(问题所在),吹打均匀,孵育1~10min,测定荧光即Fmax值。
 
(4)加入EGTA,20%26mu;l(钙螯合剂),孵育1~10min,激发波长488nm测定荧光,即Fmin值。
 
这个过程中的氯化钙的作用如何, 请高人指点, 谢谢。
 
因为正常血浆中Ca2+浓度是1mM,细胞外液的Ca2+对细胞内Ca2+有影响。加0.1%triton是增加膜通透性,使细胞外Ca2+进入细胞内,作为zui大值。加EGTA是为了螯合Ca2+,作为zui小值.生理环境中细胞内钙离子浓度远低于细胞外液(大约1:10000),细胞膜对钙的通透性变化对细胞内钙影响很大。
 
流式与werstern的区别,知道一些,不足之处请大家补充:
 
(1)Western 是检测蛋白表达的金标准,可用于检测细胞多种类型的蛋白;流式细胞术的方法多用于检测细胞膜蛋白,虽然也可通过Triton-X100给细胞打孔的方法来检测胞内蛋白,但对于分泌蛋白却是无能为力的;
 
(2)Western测蛋白含量对抗体的量需要很少,一般1:1000左右,而流式对抗体的需要量很大,一般1:50(很浪费抗体);
 
(3)采用Western方法检测细胞蛋白含量的变化一般要有内参,而流式一般要把每个样品分为两份,同时都做只加二抗(FITC标记的)的对照,这样平均到每个细胞的发光就不用内参了;
 
(4)就个人经验而言,流式用多抗不好,单抗标出来不错。
 
不过流式的应用原理主要还是抗原和抗体反应和western、免疫组化没有本质差别,但是由于免疫组化和western都有酶催化底物的放大体系,因此,流式不适合检测低表达的蛋白,低表达的还是采用western(尤其是化学发光底物更佳)和免疫组化更好。当然,流式zui大的一个特点就是,可以定量(百分比),如果是高表达的用流式细胞仪非常有优势。

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