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SRT SEC键合固定相采用的表面修饰技术，通过在高纯度具有良好机械稳定性的硅胶基质上，键合一层均匀的纳米厚度中性亲水薄膜而制备得到。工艺采用可控的 化学修饰技术，因此能确保柱与柱之间有着的重现性。SRT填料采用化学键合技术，表面亲水涂层覆盖，因此不仅具有的稳定性，而且对蛋白等生物 样品的非特异性吸附作用也非常小。精心设计的大孔体积可高的分离容量以及的分辨率。广泛应用于生物分子及水溶性聚合物的分离和检测。
水溶性SEC柱技术参数表
固定相 | SRT SEC-100 | SRT SEC-150 | SRT SEC-300 | SRT SEC-500 | SRT SEC-1000 | SRT SEC-2000 |
材料 | 表面键合亲水薄膜的硅胶 | 表面键合亲水薄膜的硅胶 | 表面键合亲水薄膜的硅胶 | 表面键合亲水薄膜的硅胶 | 表面键合亲水薄膜的硅胶 | 表面键合亲水薄膜的硅胶 |
颗粒大小 | 5 µm | 5 µm | 5 µm | 5 µm | 5 µm | 5 µm |
孔径 (?) | ~ 100 | ~ 150 | ~ 300 | ~ 500 | ~ 1,000 | ~ 2,000 |
蛋白分子量范围 | 100 - 100,000 | 500 - 150,000 | 5,000 – 1,250,000 | 15,000 - 5,000,000 | 50,000 - 7,500,000 | > 10,000,000 |
水溶性聚合物 | 500-10,000 | 500-25,000 | 1,000-100,000 | 2,500-500,000 | 5,000-1,500,000 | 50,000->2,500,000 |
pH稳定性 | 2 – 8.5，短时间可耐受 8.5-9.5 | 2 – 8.5 ，短时可耐 8.5-9.5 | 2 – 8.5 ，短时可耐 8.5-9.5 | 2 – 8.5 ，短时可耐 8.5-9.5 | 2 – 8.5 ，短时可耐 8.5-9.5 | 2 – 8.5 ，短时可耐 8.5-9.5 |
反压 (psi for a 7.8x300 mm) | ~ 700 | ~ 700 | ~ 700 | ~700 | ~700 | ~700 |
zui大压力 (psi) | ~ 4,500 | ~ 4,500 | ~ 3,500 | ~ 3,000 | ~ 3,000 | ~ 3,000 |
盐浓度范围 | 20 mM - 2.0 M | 20 mM - 2.0 M | 20 mM - 2.0 M | 20 mM - 2.0 M | 20 mM - 2.0 M | 20 mM - 2.0 M |
zui高使用温度 | ~ 80 oC | ~ 80 oC | ~ 80 oC | ~ 80 oC | ~ 80 oC | ~ 80 oC |
流动相兼容性 | 常规水相及有机相溶剂 | 常规水相及有机相溶剂 | 常规水相及有机相溶剂 | 常规水相及有机相溶剂 | 常规水相及有机相溶剂 | 常规水相及有机相溶剂 |
1.高柱容量、高分辨率
2.宽的pH范围 (pH范围2-8.5)
3.使用寿命长
4.低盐浓度洗脱，适合LC-MS分析
5.对于生物样品无强吸附
6.极低的非特异性吸附, 高的蛋白回收率及活性回收率
7.解决多维色谱分析应用
水溶性SEC柱宽的孔径选择
基于表面修饰技术，赛分SRT SEC柱提供众多孔径规格 (从100 ?到2000 ?) 以供用户选择。SRT SEC固定相在众多的分离应用中可实现高的分离及zui大的回收率。其应用领域涵盖了生物大分子 (如蛋白质和核酸)、生物小分子 (如缩氨酸和寡聚核苷酸)、天然高分子 (如多糖)、人造高分子、生物细胞 (如细菌和病毒)，以及纳米粒子等。
SRT SEC柱蛋白分子量校正曲线 | |
1.色谱柱: 7.8x300 mm, 5 µm | |
高容量、高分辨率
体积排阻色谱中，填料的孔体积决定了色谱柱的zui高容量。孔体 积越大，柱容量就越高，分离效果也越好。赛分科技精心设计的SRT固定相具有大的孔体积，例如SRT SEC-150、300、500孔体积为1.3 ～ 1.5 mL/g，而SRT SEC-100、1000、2000的孔体积为1.0 ～ 1.1 mL/g。下图显示与竞争对手T的SEC柱相比，SRT SEC-150柱具有许多优点。首先，SRT柱比T柱具有更高的分离容量。对于SRT柱和T柱，从全渗透峰 (尿嘧啶) 到全排阻峰 (甲状腺球蛋白) 之间的洗脱体积分别为6.7 mL和6.17 mL。其次，SRT柱比T柱具有更高的分辨率。图中聚-DL-丙氨酸为一种缩氨酸，平均分子量为1 ～ 5 kD (Sigma)。根据经验可知，体积排阻色谱柱中能达到基线分离的两种物质其平均分子量必须相差两倍以上。SRT SEC-150可以很好地分离核糖核酸酶A (13.7 kD) 和聚-DL-丙氨酸，而T柱则不能实现基线分离。另外，SRT柱分离聚-DL-丙氨酸的*峰形表明其对聚-DL-丙氨酸没有非特异性作用。反之，T柱分 离聚-DL-丙氨酸时的峰形变宽和拖尾现象则说明该柱固定相与样品之间存在某些非特异性结合作用。
