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技术文章
磷酸果糖激酶(PFK)活性检测试剂盒(紫外分光光度法)
点击次数:11 发布时间:2024/7/15 10:20:43
产品货号:BA1194 产品规格:50管/48样 产品简介: PFK(EC 2.7.1.11)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,负责将果糖-6-磷酸和ATP转化为果糖-1,6 二磷酸和ADP,是糖酵解过程的关键调节酶。 PFK催化果糖-6-磷酸和ATP生成果糖-1,6-二磷酸和ADP,丙酮酸激酶和乳酸脱氢酶进一步依次催化NADH氧化生成NAD+,在340nm下测定NADH下降速率,即可反映PFK活性。 注意:实验之建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者 增加样本量进行检测。 产品内容: 试剂名称 规格 保存条件 提取液 液体60 mL×1瓶 2-8℃ 试剂一 液体40 mL×1瓶 2-8℃ 试剂二 粉剂×1瓶 -20℃ 试剂三 液体45μL×1瓶 -20℃ 试剂四 液体20μL×1瓶 2-8℃ 溶液的配制: 1. 试剂二:临用加入2.8mL双蒸水充分溶解备用;-20℃分装保存一周; 2. 试剂三:液体置于试剂瓶内EP管中。临用根据用量按照试剂三:蒸馏水为2:13 的体积比例充分混匀, 现用现配;用不完的试剂三原液建议-20℃分装保存,避免反复冻融; 3. 试剂四:液体置于试剂瓶内EP管中。临用根据用量按照试剂四:蒸馏水为4:65的体积比例充分混匀,现用现配; PFK工作液(可测25个样)的配制:取19mL试剂一和1.26mL试剂二充分混匀,现用现配。 需自备的仪器和用品: 紫外分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL石英比色皿、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。 操作步骤: 一、样本的处理 1. 细菌、细胞或组织样品的制备 细菌或细胞处理:收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照每500万细菌或细胞加入1mL提取液,超声波破碎细菌或细胞(功率20%,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。 组织处理:称取约0.1g组织,加入1mL提取液进行冰浴匀浆;8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。 2. 血清(浆)样品:直接检测。 二、测定步骤 1. 分光光度计预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。 2. 操作表 试剂名称(μL) 测定管 PFK工作液 800 样本 30 试剂三 5 试剂四 5 将上述试剂按顺序加入1mL石英比色皿中,加样本的同时开始计时;在340nm波长下记录20时的初始吸光度A1,比色后迅速将比色皿连同反应液一起放入37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)水浴中,准确反应10分钟;迅速取出比色皿并擦干,340nm下比色,记录10分20时的吸光度A2,计算∆A=A1-A2。 三、PFK活力单位的计算: 1. 血清(浆)PFK活力的计算: 单位的定义:每毫升血清(浆)在反应体系中每分钟催化1nmol果糖-6-磷酸和1nmolATP转化为1nmol果糖-1,6-二磷酸和1nmol ADP定义为一个酶活力单位。 PFK(U/mL)=[△A×V反总÷(ε×d)×109 ] ÷V样÷T=450×△A 2. 组织、细菌或细胞中PFK活力的计算: (1) 按样本蛋白浓度计算: 单位的定义:每mg组织蛋白在反应体系中每分钟催化1nmol果糖-6-磷酸和1nmolATP转化为1nmol果糖-1,6-二磷酸和1nmol ADP定义为一个酶活力单位。 PFK(U/mg prot)=[△A×V反总÷(ε×d)×109 ] ÷(Cpr×V样)÷T=450×△A ÷Cpr (2) 按样本鲜重计算 单位的定义:每g组织在反应体系中每分钟催化1nmol果糖-6-磷酸和1nmolATP转化为1nmol果糖-1,6-二磷酸和 1nmol ADP定义为一个酶活力单位。 PFK(U/g 鲜重)=[△A×V反总÷(ε×d)×109 ] ÷(W×V样÷V样总)÷T=450×△A ÷W (3) 按细菌或细胞密度计算 单位的定义:每1万个细菌或细胞在反应体系中每分钟催化1nmol果糖-6-磷酸和1nmolATP转化为1nmol果糖-1,6-二磷酸和1nmol ADP定义为一个酶活力单位。 PFK(U/104 cell)=[△A×V反总÷(ε×d)×109 ] ÷(500×V样÷V样总)÷T=0.9×△A V反总:反应体系总体积,8.4×10-4L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.03mL;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,10min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万;109:单位换算系数,1mol=109nmol。 注意事项: 1. 测定过程中试剂三、试剂四和样本在冰上放置,以免变性和失活。 2. 比色皿中反应液的温度必须保持37℃或25℃,取小烧杯一只装入一定量的37℃或25℃蒸馏水,将此烧杯放入37℃或25℃水浴锅中。在反应过程中把比色皿连同反应液放在此烧杯中。 3. 好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以实验结果的准确性。 4. 若∆A大于0.5,需将酶液用酶提取液稀释,使∆A小于0.5,可提高检测灵敏度。 产品货号:BA1194 产品规格:50管/48样 产品简介: PFK(EC 2.7.1.11)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,负责将果糖-6-磷酸和ATP转化为果糖-1,6 二磷酸和ADP,是糖酵解过程的关键调节酶。 PFK催化果糖-6-磷酸和ATP生成果糖-1,6-二磷酸和ADP,丙酮酸激酶和乳酸脱氢酶进一步依次催化NADH氧化生成NAD+,在340nm下测定NADH下降速率,即可反映PFK活性。 注意:实验之建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者 增加样本量进行检测。 产品内容: 试剂名称 规格 保存条件 提取液 液体60 mL×1瓶 2-8℃ 试剂一 液体40 mL×1瓶 2-8℃ 试剂二 粉剂×1瓶 -20℃ 试剂三 液体45μL×1瓶 -20℃ 试剂四 液体20μL×1瓶 2-8℃ 溶液的配制: 1. 试剂二:临用加入2.8mL双蒸水充分溶解备用;-20℃分装保存一周; 2. 试剂三:液体置于试剂瓶内EP管中。临用根据用量按照试剂三:蒸馏水为2:13 的体积比例充分混匀, 现用现配;用不完的试剂三原液建议-20℃分装保存,避免反复冻融; 3. 试剂四:液体置于试剂瓶内EP管中。临用根据用量按照试剂四:蒸馏水为4:65的体积比例充分混匀,现用现配; PFK工作液(可测25个样)的配制:取19mL试剂一和1.26mL试剂二充分混匀,现用现配。 需自备的仪器和用品: 紫外分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL石英比色皿、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。 操作步骤: 一、样本的处理 1. 细菌、细胞或组织样品的制备 细菌或细胞处理:收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照每500万细菌或细胞加入1mL提取液,超声波破碎细菌或细胞(功率20%,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。 组织处理:称取约0.1g组织,加入1mL提取液进行冰浴匀浆;8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。 2. 血清(浆)样品:直接检测。 二、测定步骤 1. 分光光度计预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。 2. 操作表 试剂名称(μL) 测定管 PFK工作液 800 样本 30 试剂三 5 试剂四 5 将上述试剂按顺序加入1mL石英比色皿中,加样本的同时开始计时;在340nm波长下记录20时的初始吸光度A1,比色后迅速将比色皿连同反应液一起放入37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)水浴中,准确反应10分钟;迅速取出比色皿并擦干,340nm下比色,记录10分20时的吸光度A2,计算∆A=A1-A2。 三、PFK活力单位的计算: 1. 血清(浆)PFK活力的计算: 单位的定义:每毫升血清(浆)在反应体系中每分钟催化1nmol果糖-6-磷酸和1nmolATP转化为1nmol果糖-1,6-二磷酸和1nmol ADP定义为一个酶活力单位。 PFK(U/mL)=[△A×V反总÷(ε×d)×109 ] ÷V样÷T=450×△A 2. 组织、细菌或细胞中PFK活力的计算: (1) 按样本蛋白浓度计算: 单位的定义:每mg组织蛋白在反应体系中每分钟催化1nmol果糖-6-磷酸和1nmolATP转化为1nmol果糖-1,6-二磷酸和1nmol ADP定义为一个酶活力单位。 PFK(U/mg prot)=[△A×V反总÷(ε×d)×109 ] ÷(Cpr×V样)÷T=450×△A ÷Cpr (2) 按样本鲜重计算 单位的定义:每g组织在反应体系中每分钟催化1nmol果糖-6-磷酸和1nmolATP转化为1nmol果糖-1,6-二磷酸和 1nmol ADP定义为一个酶活力单位。 PFK(U/g 鲜重)=[△A×V反总÷(ε×d)×109 ] ÷(W×V样÷V样总)÷T=450×△A ÷W (3) 按细菌或细胞密度计算 单位的定义:每1万个细菌或细胞在反应体系中每分钟催化1nmol果糖-6-磷酸和1nmolATP转化为1nmol果糖-1,6-二磷酸和1nmol ADP定义为一个酶活力单位。 PFK(U/104 cell)=[△A×V反总÷(ε×d)×109 ] ÷(500×V样÷V样总)÷T=0.9×△A V反总:反应体系总体积,8.4×10-4L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.03mL;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,10min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万;109:单位换算系数,1mol=109nmol。 注意事项: 1. 测定过程中试剂三、试剂四和样本在冰上放置,以免变性和失活。 2. 比色皿中反应液的温度必须保持37℃或25℃,取小烧杯一只装入一定量的37℃或25℃蒸馏水,将此烧杯放入37℃或25℃水浴锅中。在反应过程中把比色皿连同反应液放在此烧杯中。 3. 好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以实验结果的准确性。 4. 若∆A大于0.5,需将酶液用酶提取液稀释,使∆A小于0.5,可提高检测灵敏度。
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