FlaPure Animal DNA Extraction Kit 动物基因组DNA提取试剂盒保存条件:
常温(10~25℃)保存 12 个月,其中 Proteinase K 保存条件 -20℃。
产品简介:
本试剂盒可从≤25 mg 新鲜或冷冻的动物组织(比如鼠尾、鼠趾、肝脏等)、血液、细胞中快速提取基 因组 DNA。 试剂盒采用优化的缓冲体系,使裂解液中的DNA高效特异地结合到硅基质吸附柱上。提 取过程无需 使用苯酚或等有毒溶剂,得到的 DNA 浓度和纯度高,可直接用于酶切、PCR、文库构建、 Southern Blot、分子标记等下游实验。
DNA质量高:提取的DNA浓度和纯度较高,适用于对浓度、纯度和完整性要求较高的下游实验;
安全低毒:无需酚、等有毒试剂。
适用范围:
本品适用于冷冻或新鲜动物组织样本、新鲜血液、细胞样本的基因组DNA提取。
1. 使用按瓶上标签要求在Buffer GW1和Buffer GW2 中加入相应体积的无水乙醇;
2. 使用请检查Buffer GA1和Buffer GA2 是否出现沉淀,如有请于56˚C水浴溶解后使用;
3. 若下游实验受RNA影响较大,可在步骤 2 结束后按照要求加入 RNase A;
4. 为保证基因组DNA得率及完整性,样品请勿反复冻融;
5. 所有离心操作均在室温下进行。
使用请先按照瓶上的标签,在Buffer GW1 和Buffer GW2 中加入相应体积的无水乙醇。
1. 样本处理
1) 血液及细胞样本:
a. 哺乳动物抗凝血液(无核红细胞):直接向50~200 μL新鲜或冷冻的抗凝血液样品中加入Buffer GA1补足至200 μL;
b. 禽类,鸟类,两栖类或更低生物的抗凝血液:其红细胞为有核细胞,取5~10 μL新鲜或冷冻的抗凝血液样品,加入Buffer GA1补足至200 μL;
c. 贴壁培养的细胞:应先处理为细胞悬液(大提取量为5×106个细胞),2000 rpm(400 × g)离心5 min,弃尽上清,加200 μL GA1,振荡至样品彻底悬浮;
注意:如需去除RNA,可在上述步骤完成后,加入4 μL浓度为100 mg/mL的RNase A 溶液,涡旋15 s,室温放置2 min。
2. 加入20 μL Proteinase K 溶液,混匀后加入200 μL Buffer GA2,涡旋振荡充分混匀,56˚C水浴10 min;
3. 短暂离心以去除管盖内壁的水珠。加入200 μL无水乙醇,涡旋振荡充分混匀,短暂离心,进入步骤4过柱纯化;
2)动物组织样本:
1.样本处理:正确的组织取样量是获得理想产量和纯度的关键。初次使用时,推荐动物组织量为10~15 mg, 根据实验过程及结果再调整用量。样品可用液氮研磨,或机械/玻璃匀浆器等工具进行匀浆。
组织类型 | 推荐用量 |
普通动物组织 | ≤25mg |
肝、脾、肾等内脏组织 | ≤10 mg |
鼠尾 | 一段 0.4~0.6 cm 大鼠鼠尾/ 两段 0.4~0.6 cm 小鼠鼠尾 |
a. 针对普通动物组织、内脏组织等易于研磨的样本:
液氮研磨:将研磨后的样品置于1.5 mL 离心管中,加入180 μL Buffer GA1;匀浆器匀浆:匀浆向样本中加入≤80 μL Buffer GA1进行匀浆,匀浆后再加入100 μL Buffer GA1;
b. 针对鼠尾等含较硬组织的样本(过夜消化6~8 h):将样品直接置于1.5 mL离心管中,加入180 μL Buffer GA1;
注意:确保各组织的量不超出推荐范围。样品量过多可能导致裂解不充分,导致裂解液粘稠堵塞吸附柱,可能造成提取失败或得率低。
2. 加入20 μL Proteinase K (20 mg/mL),涡旋震荡彻底混匀。普通动物组织56˚C水浴充分裂解1~3 h(鼠尾等较硬样本需过夜消化 6~8 h),期间可数次颠倒或震荡使样品分散。如需去除 RNA,可在此步骤完成后,加 入 4 μL 浓度为100 mg/mL 的 RNase A 溶液(目录号:GP708),涡旋15 s,室温放置 5~10 min;
注意:若涡旋震荡或孵育后仍有胶状物,可再次加入 20 μL Proteinase K 后孵育或延长孵育时间。
3. 加入 200 μL Buffer GA2,涡旋震荡充分混匀,70˚C 水浴10 min。短暂离心后加入 200 μL 无水乙醇, 立即涡旋震荡充分混匀(此步骤可能会产生白色沉淀,不影响后续实验,某些组织如脾、肺,可能形成溶胶状产物,此时推荐进行剧烈震荡或涡旋处理),进入步骤4过柱纯化;过柱纯化:
4. 短暂离心,将步骤3所得溶液全部加入吸附柱中(吸附柱放入收集管中),12,000 rpm(13,000 ×g)离心1 min,倒掉收集管中废液,将吸附柱重新放回收集管中,若一次不能加完溶液,可分多次转入;
5. 向吸附柱中加入500 μL Buffer GW1(使用检查是否已加入无水乙醇),12,000 rpm(13,000 ×g)离心 1 min,倒掉收集管中废液,将吸附柱重新放回收集管中;
6. 向吸附柱中加入500 μL Buffer GW2(使用检查是否已加入无水乙醇),12,000 rpm(13,000 ×g)离心 1 min,倒掉收集管中废液,将吸附柱重新放回收集管中;
7. 重复步骤6 ;
8. 将吸附柱放回收集管中,12,000 rpm(13,000 ×g)离心2 min,开盖室温晾干数分钟;
注意:此步为去除残余漂洗液,不可省略。
9. 将吸附柱置于新的离心管(自备)中, 向吸附柱中间部位悬空加入50~200 μL Buffer TE 或灭菌,室温放置2~5 min,12,000 rpm(13,000 ×g)离心1 min,收集DNA溶液,-20℃保存DNA。
注意:
1) 若需增加产量,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,室温放置 2~5min ,12,000rpm(13,000 × g)离心1 min。
2) 如果下游实验对pH值或EDTA敏感,可以用灭菌水洗脱。洗脱液的 pH值对洗脱效率有较大影响,若用水作洗脱液应保证其pH值在7.0~8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围),如需长期保存,推荐用Buffer TE洗脱并于-20°C保存。
常见问题与解决办法:
Q1:柱子堵塞?
A1:
1) 样品用量过多。建议按照说明书推荐量进行提取,尤其是富含DNA的组织需注意减少用量;
2) 样品未充分裂解或研磨。充分裂解或研磨样品,鼠尾组织建议过夜消化;
3) 离心温度过低。本产品使用操作均在室温下进行。
Q2:DNA 得率低?
A2:
1) 样品裂解不充分。若样品过量适当减少样品量,延长56˚C孵育时间,或在步骤2中再加入20 μL Proteinase K (20 mg/mL)消化;
2) 样品用量过少。建议按照说明书推荐量进行提取;
3) 样品材料质量不好。尽量选用新鲜组织样品,样品采集后应液氮速冻后置于-80℃保存尽快提取,避免反复冻融。
Q3:后期实验受RNA影响?
A3:
1) 未加入RNase A消化。若后续实验需要去除RNA影响, 可按照说明书步骤加入RNase A消化;
2) 样品中RNA含量过多。可适当增加RNase A用量或延长消化时间。
FlaPure Animal DNA Extraction Kit 动物基因组DNA提取试剂盒仅用于科研,不能用于临床诊断!所有产品仅供科研使用,不得用于其他用途。