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技术文章

致突变 PCR2022动态已更新

点击次数:15562 发布时间:2022/8/10 23:49:54

 简介

环状质粒 PCR 构建定点突变序列,是指直接将全长双链质粒 DNA 以线性形式扩增,产生一种 DNA 双链上带缺口的突变质粒,该质粒经磷酸化后自身连接形成环状闭合质粒。

 

原理

环状质粒 PCR 构建定点突变序列的基本原理是限制性内切酶 Dpn I 特异性切割双链 DNA 中甲基化序列 Gm6ATC。从大肠杆菌中分离的质粒已在体内的内源性 Dam 甲基化酶作用下被甲基化了,因而对 Dpn I 的切割敏感,半甲基化的 DNA 被 Dpn I 切割的效率较低。相反,用四种通用脱氧核糖核苷酸体外合成的 DNA 没有甲基化,因而抵抗切割。在定点突变后,能用 Dpn I 降解剩余的甲基化了的野生型模板,从而富集体外合成的未甲基化 DNA。由于 Dpn I 选择性地破坏亲本模板,在 PCR 为基础的诱变中,这一方法的主要用途是净化合成的双链 DNA。 该方法以变性质粒 DNA 为模板,使用两条寡苷酸和高保真聚合酶引导 DNA 合成。经过多轮热循环后,全长双链质粒 DNA 以线性形式扩增,产生一种 DNA 双链上带缺口的突变质粒。 该质粒经磷酸化后自身连接形成环状闭合质粒。直接在 PCR 产物中或者在连接产物中加入限制性内切酶 I, 切割原始质粒模板及原始模板与新合成链的杂合体,转化大肠杆菌感受态, 根据突变体的复杂性和 DNA 模板长度不同,15%〜80% 的转化子克隆含有需要的突变体。图解示意如下所示。

 

材料与仪器

器材:

PCR 扩增仪、电泳仪、水平电泳槽


试剂:


①1mol/L NaOH 和 1 mmol/L EDTA 溶液。


②NaAc (3mol/L, pH4. 8)。


③TE (pH8.0)。


④10 X PCR 缓 冲液:内含 15 mmol/L MgCl2 , 500 mmol/L KC1, 100 mmol/L Tris-HCl(pH8. 3, 25°C)。


⑤10XdNTP 混合物:内含 2 mmol/L dGTP, 2 mmol/L dATP, 2 mmol/L dCTP 和 2 mmol/L dTTPo


⑥2 种寡核苷酸引物


⑦质粒 DNA 模板 


⑧热稳定 DNA 聚合酶。


⑨凝胶:含 0.5 g/ml 溴化乙锭的 1% 琼脂糖凝胶。


⑩ATP (10 mmol/L)。


⑪噬菌体 T4 多核苷酸激酶。


⑫ 噬菌体 T4 多核苷酸激酶缓冲液:内含 10 mmol/L MgCl2. 70 mmol/L Tris-HCl (25°C, pH7. 6)、5 mmol/L DTT。


⑬ 噬菌体 T4DNA 连接酶。


⑭ 噬菌体 T4 DNA 连接酶缓冲液:内含 10 mmol/L MgCl、50 mmol/L Tris-HCl (25°C, pH7. 5)、10 mmol/L DTT、1 mmol/L ATP。


⑮Dpn I 限制性内切酶及其缓冲液。


⑯大肠杆菌感受态。

 

步骤

环状质粒 PCR 构建定点突变序列的基本过程可分为如下几步:
 
①将 1〜10ug 质粒 DNA 溶于 40ul 水中,加入 10ul 1mol/L NaOH 和 1 mmol/L EDTA 溶液。 37°C 孵育变性质粒 DNA 模板。
 
②加入 5ul 3mol/L NaAc (pH4. 8) 中和上述反应液,再加入 150ul 预冷的乙醇沉淀 DNA。
 
③在微型离心机上 4°C 离心 10 min 收集变性的质粒 DNA。小心弃去乙醇上清,用 150ul 70% 乙醇清洗沉淀,重新离心 2 min 后弃上清,室温下使所有的乙醇蒸发。将 DNA 重新溶在 20ul 水中。
 
④在一支 PCR 管中加入下列溶液混匀。
10XPCR 缓冲液 10ul 变性的质粒 DNA 模板 10ng
热稳定 DNA 聚合酶 2U    加水至 100ul
10XdNTP 混合物 10ul      两种寡核苷酸引物(10umol/L)各 1ul
 
⑤PCR 扩增:13〜19 次循环,每次 94°C 变性 30s, 55°C 退火 Imin, 72°C 延伸 5 min;两种寡核苷酸引物 (10 卩 mol/L) 各 1M1 次延伸 10 min。
 
⑥琼脂糖凝胶电泳检查靶 DNA 扩增情况。
 
⑦用苯酚-抽提扩增产物两次,乙醇沉淀。
 
⑧将 DNA 重新溶在
10X 噬菌体 T4 多核苷酸激酶缓冲液 10ul 噬菌体 T4 多核苷酸激酶 10U
10 mmol/L ATP 10ul 加水至 100ul
37°C 孵育 1 h, 68°C 加热 10 min 灭活激酶。用苯酚-抽提磷酸化的 DNA 两次,乙醇沉淀收集 DNA。将上述磷酸化的 DNA 沉淀重悬在 90ul TE 中。
 
⑨进行连接反应:
10X 噬菌体 T4 DNA 连接酶缓冲液 10ul
 噬菌体 T4 DNA 连接酶 4U
10 mmol/L ATP 10ul  加水至 100ul
步骤⑧磷酸化的 DNA 10-100ng
16℃ 孵育 12〜16 h。
 
⑩苯酚-抽提 DNA 连接产物两次,乙醇沉淀收集 DNA。DNA 沉淀重悬在 90ul 水中。 ⑪加入 10ul Dpn I 缓冲液,10U Dpn I 限制性内切酶,混匀,37°C 孵育 1 h。
 
⑫消化产物转化大肠杆菌感受态。
 
⑬筛选突变体,通过序列分析进行确证。
 

注意事项

①通过 PCR 构建定向突变体时为了避免碱基的错误掺入,应使用带 3'f 5』外切核酸酶校对 能力的热稳定 DNA 聚合酶,且该酶不能具有催化非模板性掺入腺昔酸残基能力。


②从理论上讲,模板量大将降低为获得足量产物所需的循环次数,也就减少了 Taq DNA 聚 合酶诱导的碱基错误掺入的机会。然而高浓度模板有妨碍顺利扩增的倾向。另外,扩增循环次数 过少会导致产生末端开放链,造成高本底。


③由于线性 DNA 片段转化效率低,在重组 PCR 中使用的感受态细胞转化效率要求非常高。


④在重组 PCR 中,如果质粒不能在 PCR 扩增部分的外侧被切开成线性,则必须纯化 PCR 产物,使其与质粒模板分开,而且如果以超螺旋质粒为模板,要进行更多次数的扩增循环,这是因为与线性模板相比,超螺旋模板 PCR 产物量要低。


⑤环状质粒 PCR 扩增反应混合物中 dNTP 和 Mg2+的起始浓度分别不要超过 250umoI/L 和 1. 5 mmol/L。


⑥环状质粒 PCR 线性扩增应保持在少循环次数,单碱基置换需要 12 个循环,单个氨基 酸置换需要 16 个循环,插入或缺失任何大小的 DNA 片段,使用 18 个循环,为了满足这一条件必须使用相对大量的模板 DNA。


⑦环状质粒 PCR 如果扩增反应正常但突变体产量低,应怀疑 Dpn I 酶的消化过程,必要时可调整 Dpn I 的用量和消化时间。


⑧环状质粒 PCR 如果突变效率高可不进行扩增产物的磷酸化和连接步骤,扩增产物可以直接转化大肠杆菌感受态。


⑨高保真热稳定 DNA 聚合酶延伸效率低于 taqDNA 聚合酶,延伸时间相对要长一些。


⑩少数 dam-缺陷大肠杆菌或来自其它宿主的 DNA 可用 Dam-甲基化酶进行体外甲基化。


原创作者:上海初态生物科技有限公司

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