问题

原因

解决方案

条带形状不好看

胶凝的不均匀，聚合不好

灌胶将溶液充分混匀

上样齿扭曲使上样孔大小不一

上样用针头将齿拨正，注意不要将针头插入胶内

某些样品盐浓度较高

除盐或将样品盐浓度调成一致

每孔上样量不一致

调整上样量使基本一致

缓冲液陈旧，成分改变

重配

凝胶下面有气泡

电泳先将气泡赶走

电泳时温度过高

降低电流或电压

目的蛋白信号弱

样品上样量不足或目的蛋白浓度过低

加大上样量或浓缩样品

转膜效率低

以下单列

抗体浓度低

增加抗体浓度或延长孵育时间

显色剂底物浓度不足

增加显色剂用量

显色剂失效

更换显色剂（吸取A、B液的枪头不可混用）

显色或曝光时间不足

延长显色或曝光时间

转膜效率低

转膜缓冲液pH值与目的蛋白等电点相近

提高转膜缓冲液pH值

凝胶与膜之间存在气泡

转膜要排尽气泡

凝胶与转印膜两侧滤纸大面积接触

滤纸、转印膜和凝胶大小要基本一致，避免滤纸直接接触

转印膜种类选择不当

使用质量可靠的PVDF膜或硝酸纤维素膜

电压或电流过小

湿转时20mA恒流，半干转时25V左右恒压

转印时间过长或过短，蛋白还在凝胶中或穿透转印膜

先电泳，根据蛋白大小及转印装置选择合适的转印时间

湿转过程中环境温度过高

使用预冷的转膜缓冲液或将装置至于4度

显色或曝光后无条带

胶与膜方向反了

转膜时应依次放好PDVF膜与凝胶所对应的电,即凝胶对应负,PDVF膜对应正。

选用的一抗、二抗及显色方法不合适

选择合适的一抗、二抗和显色方法

目的蛋白含量低于检测下限

加大上样量或浓缩样品

抗体效价过低

增加抗体浓度

抗体孵育时间不足

延长孵育时间，37°C孵育1小时以上

抗体过度洗涤

减少洗涤时间及次数

加入HRP底物反应与曝光检测之间间隔时间过长

反应3到5分钟及时检测

背景过高

封闭物用量不足

提高封闭物浓度，孵育时候确认封闭液全都浸没转印膜

封闭物使用不当

检测生物素标记的蛋白时不可用脱脂奶粉封闭

封闭时间不够

室温37度封闭1小时以上，4度封闭过夜

抗体非特异性结合

降低抗体浓度，减少孵育时间

抗体浓度过高或洗涤不够

降低抗体浓度，增加洗涤次数和时间

化学显色底物过多

按说明书加入适量的显色底物

杂带多

杂蛋白多

处理目的蛋白

抗体特异性不强

使用特异性强的抗体

抗体孵育时间过久

减少抗体孵育时间

二抗与抗原有交叉反应

选择合适的封闭物

底物显色与曝光时间长了

缩短显色及曝光的时间

大分子量WB

膜孔径太小

更换孔径较大的膜

转膜电压电流低

提高电压/电流

转膜时间短

延长转膜时间

胶浓度太大

使用低浓度的胶

转膜缓冲液配方不合适

调整转膜缓冲液中甲醇及SDS浓度