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市场推送:DiD,DiO,DiI,DiR 和 DiS 细胞膜染料@2024实验室动态
点击次数:58 发布时间:2024/9/6 10:40:51
产品描述 DiD,DiO,DiI,DiR和DiS染料是一族亲脂性的荧光染料,可以用来染细胞膜和其它脂溶性生物结构。当与细胞膜结合后其荧光强度大大增强,这类染料有着很高的淬灭常数和激发态寿命。一旦对细胞染色,这类染料在整个细胞膜上扩散,jia浓度时可以使整个细胞膜染色。它们的荧光颜色区分明显:DiI(橙色荧光),DiO(绿色荧光),DiD(红色荧光)和 DiR (深红色荧光)这使得他们可以用来对活细胞进行多色成像和流式分析。DiI和DiO可以分别用标准的 FITC和TRITC的滤光片。DiD可以用 633 nm He–Ne 激光器激发,有着比DiI更长的激发波长和发射波长,在细胞和组织染色中更有价值。 DiR的红外荧光可以穿透细胞和组织,在活体成像中用来示踪。 表1. DiD,DiO,DiI,DiR,DiS的化学性质 目录号 产品名称 规格 分子量 Ex/Em 推荐滤光器* DiD 22033 DiD labeling solution 10 mL 959.91 644/663 nm XF47-Omega, 31023-Chroma DiO 22038 DiOC2(3) iodide 100 mg 881.7 484/501 nm XF23-Omega, 31001-Chroma 22039 DiOC3(3) iodide 100 mg 488.32 482/497 nm XF23-Omega, 31001-Chroma 22040 DiOC7(3) iodide 100 mg 600.57 482/504 nm XF23-Omega, 31001-Chroma 22042 DiOC16(3) perchlorate 25 mg 825.6 484/501 nm XF23-Omega, 31001-Chroma 22045 DiOC5(3) iodide 100 mg 544.47 482/504 nm XF23-Omega, 31001-Chroma 22046 DiOC6(3) iodide 100 mg 572.52 482/504 nm XF23-Omega, 31001-Chroma 22066 DiO perchlorate 100 mg 881.7 484/501nm XF23-Omega, 31001-Chroma DiI 22035 DiIC12(3) perchlorate 100 mg 765.55 549/565 nm XF32-Omega, 31002-Chroma 22044 DiIC16(3) perchlorate 100 mg 877.76 549/565 nm XF32-Omega, 31002-Chroma 22052 DiIC18(3)-DS 50 mg 993.53 555/570 nm XF32-Omega, 31002-Chroma 22054 DiIC18(5)-DS 50 mg 1019.57 650/670 nm XF47-Omega, 31023-Chroma 22056 DiIC1(5) iodide 100 mg 510.45 638/658 nm XF47-Omega, 31023-Chroma 22101 DiI iodide 100 mg 961.32 549/565 nm XF32-Omega, 31002-Chroma 22102 DiI perchlorate 100 mg 933.87 549/565 nm XF32-Omega, 31002-Chroma 22103 DiI triflate 100 mg 983.48 549/565 nm XF32-Omega, 31002-Chroma DiR** 22070 DiR iodide 10 mg 1013.39 748/780 nm XF112-Omega, 41009-Chroma DiS 22073 DiSC2(3) 25 mg 492.44 560/571 nm XF32-Omega, 31002-Chroma 22076 DiSC3(5) 100 mg 546.53 660/675 nm XF47-Omega, 31023-Chroma 。 **DiR的发射波长肉眼不可见,所以需要配备CCD镜头或其他的近红外检测仪器。 使用方法 1. DiD,DiO,DiI,DiR和DiS细胞膜染色液制备 (1)配置DMSO或EtOH 储存液:储存液用 DMSO或EtOH配置浓度1~5 mM。 注意:未使用的储存液保存在-20 oC,避免反复冻融。 (2)工作液制备:用合适的缓冲液(如:无血清培养基,HBSS或PBS)稀释储存液,配制浓度为1~ 5 µM的工作液。 注意:工作液的终浓度是根据不同细胞和实验的经验来配制。可以从推荐浓度的十倍以上寻找jia条件。 2. 悬浮细胞染色 (1)悬浮细胞密度为 1 × 106/mL加入到工作液中。 (2)在37 ℃培养细胞 2~20分钟,不同的细胞jia培养时间不同。 (3)染色细胞试管在1000~1500转离心5分钟。 (4)倾倒上清液,再次缓慢加入预温37℃的培养液。 (5)重复(3),(4)步骤两次以上。 3. 粘壁细胞的染色 (1)使粘壁的细胞在无菌实验室培养。 (2)从培养基中移走盖玻片,吸走过量培养液,将盖玻片放在潮湿的环境中。 (3)在盖玻片的一角加入100μL的染料工作液,轻轻晃动使染料均匀覆盖所有细胞。 (4)在37 ℃培养细胞 2~20分钟,不同的细胞jia培养时间不同。 (5)吸干染料工作液,用培养液洗盖玻片2~3次,每次用预温的培养基覆盖所有细胞,培养5~10分钟,然后吸干培养基。 4. 显微镜检测 (1)DiD,DiO,DiI,DiR和DiS滤光器的选择参见表1。 (2)多色染料的同时检测,滤光器按照以下设定: a) DiI和DiO=Omega XF52,Chroma 51004; b) DiI和DiD=Omega XF92,Chroma 51007; c) DiI,DiO和DiD=Omega XF93,Chroma 61005 5. 流式细胞仪的检测 DiD,DiO,DiI,DiR和DiS 染色的细胞可以分别用经典的FL1,FL2,FL3和FL4流式细胞仪检测。 储存条件:-20℃干燥避光保存,有效期一年。 DiR小动物活体成像荧光试剂 产品名称: DiR (DiIC18(7)1,1’-dioctadecyltetramethyl indotricarbocyanine Iodide) 分子式/分子量: C63H101IN2=1013.4 da吸收波长/发射波长: 748/780 nm 推荐滤光片设置: 710 ex/760 em 结构式: Figure 1. T-cells isolated from the spleen were fluorescently stained with DiR and i.v. injected (5x106 cells/mouse) into a Nu/Nu mouse. Images above taken 24hrs post injection with IVIS Spectrum show cells homing to the spleen. DiR染料是亲脂性的近红外花菁荧光染料,可以用来染细胞膜和其它脂溶性生物结构。18个碳的长链插入细胞膜中从而对细胞进行染色, 而细胞间的染料转移可以忽略不计。DiR的发射的是近红外荧光可以穿透细胞和组织,在活体成像中用来示踪。 DIR一般对原代细胞进行荧光染色并可进行活体成像分布观察, (例如下列细胞embryonic stem cells, bone marrow derived stem cells, adipose derived stem cells, lymphocytes and erythrocytes), Figure 2. DiR stock was prepared by dissolving 25 mg in 3 mL ethanol. Working solution of 320 µg/mL was prepared by diluting 199 µL of stock solution in 5 mL PBS. T-cells isolated from the spleen were incubated with 320 µg/mL DiR. After 30 min incubation, cells were spun down for 3 min at 1000 rpm at 4 ºC resulting in a blue pellet. Cells were washed twice in PBS and injected intravenously (5 x 106 cells/mouse). Control group was injected with 5 x 106 cells/mouse in PBS. Mice were imaged with IVIS Spectrum at 10 min, 1hr, 6hr and 24 hrs post injection. Ideal filter set for DiR imaging is 710 nm excitation and 760 nm emission. Mice were imaged dorsally as well as ventrally at all time points. Brain, bones, spleen, liver, lungs and kidneys were harvested for ex vivo imaging 24 hrs post injection. Non-invasive in vivo imaging showed the homing process of injected T cells to the liver and spleen in real time, which was confirmed by ex vivo imaging.
原创作者:上海瓦兰生物科技有限公司