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生物消息:人乳头瘤病毒16型E7蛋白(HPV16 E7)试剂盒(ELISA)@2024实验室动态

点击次数:31 发布时间:2024/12/3 9:37:14

 本试剂盒用于体外定性检测血清、血浆、组织匀浆及相关液体样本人乳头瘤病毒16型E7蛋白HPV16 E7)。

有效期:6个月

保存条件:2-8℃

本试剂盒仅供科研使用,不得用于临床诊断

 

 

实验原理

试剂盒采用双抗体夹心法酶联免疫吸附试验(ELISA)。往预先包人乳头瘤病毒16型E7蛋白HPV16 E7)捕获抗体的包被微孔中,依次加入标本、阴性和阳性对照、HRP标记的检测抗体,经过温育并彻di洗涤。用底物TMB显色,TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成终的黄色。颜色的深浅和样品中的人乳头瘤病毒16型E7蛋白HPV16 E7)呈正相关。用酶标仪在450nm 波长下测定吸光度(OD 值),判定阴阳性。

 

样本处理及要求

1.  血清将收集于血清分离管的全血标本在室温放置2小时或4过夜,然后1000×g离心20 分钟,取上清即可,或将上清置于-20-80保存,但应避免反复冻融。
2.  血浆EDTA或肝素作为抗凝剂采集标本,并将标本在采集后的30分钟内于2-8 1000×g离心15分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20-80保存,但应避免反复冻融。
3.  组织匀浆:用预冷的PBS (0.01M, pH=7.4)冲洗组织,去除残留血液(匀浆中裂解的红细胞会影响测量结果),称重后将组织剪碎。将剪碎的组织与对应体积的PBS(一般按1:9的重量体积比,比如1g的组织样品对应9mLPBS,具体体积可根据实验需要适当调整,并做好记录。推荐在PBS中加入蛋白酶抑制剂)加入玻璃匀浆器中,于冰上充分研磨。为了进一步裂解组织细胞,可以对匀浆液进行超声破碎,或反复冻融。zui后将匀浆液于5000×g离心5~10分钟,取上清检测。

4.  细胞培养物上清或其它生物标本:1000×g离心20分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。

注:标本溶血会影响zui后检测结果,因此溶血标本不宜进行此项检测。

 

需要而未提供的试剂和器材

1. 酶标仪(450nm

2. 高精度加样器及枪头:0.5-10uL2-20uL20-200uL200-1000uL

3. 37℃恒温箱

4. 蒸馏水或去离子水

 

试剂盒组成

 

名称

96孔配置

48孔配置

备注

微孔酶标板

96

48

阴性对照

0.3mL

0.3mL

阳性对照

0.3mL

0.3mL

样本稀释液

6mL

3mL

检测抗体-HRP

10mL

5mL

20×洗涤缓冲液

25mL

15mL

按说明书进行稀释

底物A

6mL

3mL

底物B

6mL

3mL

终止液

6mL

3mL

封板膜

2

2

说明书

1

1

自封袋

1

1

 

注意事项

1. 严格按照规定的时间和温度进行温育以bao证准确结果。所有试剂都必须在使用达到室温20-25℃。使用后立即冷藏保存试剂。

2. 洗板不正确可以导致不准确的结果。在加入底物确保尽量吸干孔内液体。温育过程中不要让微孔干燥掉。

3. 消除板底残留的液体和手指印,否则影响OD值。

4. 底物显色液应呈无色或很浅的颜色,已经变蓝的底物液不能使用。

5. 避免试剂和标本的交叉污染以免造成错误结果。

6. 在储存和温育时避免强光直接照射。

7. 平衡至室温后再打开密封袋以防水滴凝聚在冷板条上。

8. 任何反应试剂不能接触漂白溶剂或漂白溶剂所散发的强烈气体。任何漂白成分都会破坏试剂盒中反应试剂的生物活性。

9. 不能使用过期产品。

10. 如果可能传播疾病,所有的样品都应管理好,按照规定的程序处理样品和检测装置

 

试剂准备

试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡后方可使用。

2洗涤缓冲液的稀释:蒸馏水按120稀释,即120×洗涤缓冲液加19份蒸馏水。

 

操作步骤

1.  从室温平衡20min后的铝箔袋中取出所需板条,剩余板条用自封袋密封放回4℃

2.  设置阴性对照、阳性对照孔和样本孔,阴性、阳性对照孔各加50μL对照品

3.  样本孔待测样本50μL;空白孔不加。

4.  除空白孔外,对照孔和样本孔中每孔加入辣根过氧化物酶(HRP)标记的检测抗体100μL,用封板膜封住反应孔,37℃水浴锅或恒温箱温育60min

5.  弃去液体,吸水纸上拍干,每孔加满洗涤液350μL,静置1min,甩去洗涤液,吸水纸上拍干,如此重复洗板5次(也可用洗板机洗板)。

6.  每孔加入底物AB50μL37℃避光孵育15min

7.  每孔加入终止液50μL15min内,在450nm波长处测定各孔的OD值。

 

实验结果计算

1. 阴性对照OD值:小于0.2

2. 阳性对照OD值:大于0.8

3、阳性判断(Cut-Off值):阴性对照OD+0.25,样本OD值大于阈值,判定为阳性,反之,为阴性。

原创作者:上海瓦兰生物科技有限公司

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