本试剂盒仅供科研使用
游离胆固醇(free cholesterol, FC)含量试剂盒说明书
(货号:WS1190W 微板法 96 样)
一、产品简介:
游离胆固醇(FC)不仅参与形成细胞膜,而且是合成胆汁酸,维生素 D 以及甾体激素
的原料。其血清浓度可作为脂代谢的指标。
游离胆固醇(FC)在胆固醇氧化酶作用下被氧化生成 4-胆甾烯酮和 H2O2;接着与 4-
氨基氨替吡啉等反应生成红色醌类化合物,其在 510nm处有特征吸收峰,通过检测 510nm
处吸光值即可得出 FC 含量。
二、试剂盒的组分与配制:
试剂名称
规格
保存要求
备注
提取液
液体 100mL×1 瓶
4℃保存
试剂一
粉剂 mg×1 支
4℃保存
用甩几下使试剂落入底部,再
加 3.2mL 蒸馏水,充分震荡溶解
试剂二
液体 9mL×1 瓶
4℃保存
试剂三
液体 6mL×1 瓶
4℃保存
标准品
液体 1mL×1 支
4℃保存
三、所需的仪器和用品:
酶标仪、96 孔板、可调式移液枪、水浴锅、离心机、研钵、蒸馏水。
四、游离胆固醇(FC)含量测定:
建议正式实验选取 2 个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验
样本和试剂浪费!
1、样本制备:
① 组织样本:
称取约 0.1g 组织样本加入研钵中,加入 1mL 提取液,在冰上进行匀浆,12000rpm,
4℃或室温离心 10min,取上清液待测。
【注】:若增加样本量,可按照组织质量(g):提取液(mL)为 1:5~10 的比例进行提取。
② 细菌/细胞样本:
先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;取约 500 万细菌或细胞加入 1mL
提取液,超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次);
12000rpm 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
【注】:若增加样本量,可按照细菌/细胞数量(104):提取液(mL)为 500~1000:1 的比例进行提取。
③ 液体样本:澄清的液体样本直接测定,若浑浊则离心后取上清检测。
2、上机检测:
① 酶标仪预热 30 min,调节波长到 510 nm。
② 所有试剂解冻至室温(25℃)。
③ 在 96 孔板中依次加入:
试剂名称(μL) 测定管
标准管
(仅做一次)
空白管
(仅做一次)
标准品
40
样本
40
试剂一
30
30
30
试剂二
70
70
110本试剂盒仅供科研使用
2
试剂三
60
60
60
混匀,避光孵育 60min,于 510nm 处读取各管吸光值 A。
【注】若测定管的 A 值大于 1,则需将样本进行稀释(用提取液稀释)或减少样本加样量 V1(如减至 20μL,
则试剂二相应增加),稀释倍数 D 或样本量 V1 需代入计算公式重新计算。
五、结果计算:
1、按样本质量计算
FC(μg/g 重量)=(C 标准×V2) ×Mr×(A 测定-A 空白)÷(A 标准-A 空白)÷(W×V1÷V) ×D
=193.3×(A 测定-A 空白)÷(A 标准-A 空白) ÷W×D
2、按细胞数量计算:
FC(μg/104 cell)=(C 标准×V2) ×(A 测定-A 空白)÷(A 标准-A 空白)÷(500×V1÷V) ×D
=0.39×(A 测定-A 空白)÷(A 标准-A 空白) ×D
3、液体中 FC 含量计算:
FC(μg/mL)=(C 标准×V2) ×Mr×(A 测定-A 空白)÷(A 标准-A 空白)÷V1×D
=193.3×(A 测定-A 空白)÷(A 标准-A 空白)
C 标准---0.5μmol/mL;
Mr=386.6---胆固醇分子量;
V1---样本加入体积,0.04mL;
V2---标准品加入体积,0.04mL;
V---提取液体积,1mL;
D---稀释倍数;
500---细胞数量;
W---样本取样质量。