本试剂盒仅供科研使用
土壤半纤维素酶/土壤木聚糖酶试剂盒说明书
(货号:WS6230W 微板法 48 样)
一、产品简介:
半纤维素酶主要检测木聚糖酶活力,是将木聚糖降解成低聚糖和木糖的一组酶的总
称,广泛应用于酿造和饲料工业中。
土壤半纤维素酶在酸性环境下能将木聚糖降解成还原性寡糖和单糖,进一步在沸水浴
条件下与 3,5-二硝基水杨酸发生显色反应,在 540nm 处有特征吸收峰,反应液颜色的
深浅与酶解产生的还原糖量成正比,通过测定反应液在 540nm 吸光值增加速率,即可
计算该酶活力大小。
二、试剂盒组分与配制:
试剂名称
规格
保存要求
备注
试剂一
液体 100mL×1 瓶
4℃保存
试剂二
液体 15mL×1 瓶
4℃保存
试剂三
液体 20mL×1 瓶
4℃保存
标准品
粉剂×1 支
4℃保存
若重新做标曲,则用到该试剂
三、所需的仪器和用品:
酶标仪、96 孔板、可调式移液器、天平、常温离心机、空气浴(恒温震荡仪)、水浴锅。
四、土壤半纤维素酶活性测定:
建议正式实验选取 2 个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验
样本和试剂浪费!
1、样本制备:
取新鲜土样或干土(风干或者 37 度烘箱风干),先粗研磨,过 40 目筛网备用。
【注】:土壤风干,减少土壤中水分对于实验的干扰;土壤过筛,保证取样的均匀细腻;
2、上机检测:
① 酶标仪预热 30min,调节波长至 540nm。
② 在 EP 管中依次加入:
试剂名称(μL)
测定管
对照管
土样(g)
0.3
0.3
试剂一
600
900
试剂二
300
充分混匀,40℃培养 6 小时(振荡培养或间隔一段时间手动振荡
混匀几下),12000rpm,25℃离心 10min,上清液待用
③ 显色反应,在 EP 管中依次加入:
上清液
40
40
试剂三
200
200
混匀,沸水浴(95-100℃,可用封口膜缠紧,防止水分流失)5min
后,冷却至室温。
蒸馏水
800
800
混匀,若浑浊则 8000rpm 室温离心 5min,取 200μL 液体至 96
孔板中,于 540nm 处读取吸光值 A,△A=A 测定管-A 空白管。
【注】:1.若ΔA 较小,可延长 40℃的孵育时间 T(如 24 小时或更长),或增加土样质量 W,
或增加③歩显色反应步骤中的上清液 V1(如由 40μL 增至 240μL 或更多,则蒸馏
水相应减少)。则改变后的 T 和 W 和 V1 需代入计算公式重新计算。本试剂盒仅供科研使用
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2.若测定管 A 值大于 1.5 或△A 大于 1,③歩显色反应步骤中的上清液可用蒸馏水稀释,
则稀释倍数 D 代入公式计算。
五、结果计算:
1、标准曲线方程:y=7.5568x+0.0007,x 是标准品质量(mg),y 是△A。
2、酶活定义:PH4.8 条件下,每克土壤每天分解木聚糖产生 1mg 还原糖所需的酶量为
一个酶活单位。
土壤半纤维素酶活力(mg/d/g 土样)=[(△A-0.0007)÷7.5568]×(V2÷V1)÷W÷T×D
=12×(△A-0.0007)÷W×D
V1---显色反应中上清液体积,40μL=0.04mL;
V2---反应总体积,900μL=0.9mL;
T---反应时间,1/4d;
W---土壤样本质量,g;
D---稀释倍数,未稀释即为 1。
附:标准曲线制作过程:
1 制备标准品母液(5mg/mL):向标准品 EP 管里面加入 1mL 蒸馏水(母液需在两天
内用且-20℃保存)。
2 把母液稀释成六个浓度梯度的标准品:0, 1, 2, 3, 4, 5. mg/mL。也可根据实际样本来
调整标准品浓度。
3 在显色反应阶段,按照测定管加样表操作,依据结果即可制作标准曲线。