本试剂盒仅供科研使用
考马斯亮蓝法测蛋白含量试剂盒说明书
(货号:WS7140W 微板法 96 样)
一、产品简介:
在酸性溶液中,考马斯亮蓝 G-250 与蛋白质结合形成蓝色复合物;经光谱扫描,该蓝
色复合物在 600nm 处有大吸收峰,在一定的蛋白浓度范围(1-1000μg/mL)内,其颜
色的深浅与蛋白质的含量成正比。
二、测试盒组成和配制:
试剂名称
规格
保存要求
备注
试剂一
液体 20mL×1 瓶
4℃保存
标准品
液体 1mL×1 支
4℃保存
若重新做标曲,则用到该试剂
三、所需的仪器和用品:
酶标仪、96 孔板、离心机、可调式移液器、研钵和蒸馏水。
四、蛋白含量检测:
建议正式实验选取 2 个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验
样本和试剂浪费!
1、样本制备:
1
组织样本:
称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液(提取液可选用酶提取缓冲液、蒸馏水、生理盐
水)冰浴匀浆,12000rpm,4℃离心 10min,取上清,即待测液。
【注】:依据研究经验,一般需将样本粗提液稀释到适当倍数再进行测定,如 10 倍。实
验可以先选 2 个样本测定,摸索确定适合本次实验的稀释倍数。
2
细菌或细胞样本:
先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;取 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取
液;超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30
次),12000rpm,4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
【注】:依据研究经验,一般需将样本粗提液稀释到适当倍数再进行测定,如 10 倍。实
验可以先选 2 个样本测定,摸索确定适合本次实验的稀释倍数。
3
液体样本:澄清无色液体样品可以直接测定。若浑浊,离心后取上清检测。
【注】:依据研究经验,一般需将样本稀释到适当倍数再进行测定,如 10 倍。实验
可以先选 2 个样本测定,摸索确定适合本次实验的稀释倍数。
2、上机检测:
① 酶标仪预热 30 min 以上,设定波长为 600nm。
② 在 96 孔板中依次加入:
试剂名称(μL)
测定管
空白管(只做一次)
待测液
40
蒸馏水
40
试剂一
200
200
混匀,,置于室温(25℃)静置 10min,600nm 处测定吸光值 A
(5~15min 完成比色),△A= A 测定管-A 空白管。
【注】:1.确保蛋白浓度在 0~100µg/ml 范围内,否则需要做相应稀释,即好使 A 测定的值低于 1.2;稀
释倍数 D 带入公式计算。
2.去污剂、Triton X-100、十二烷基硫酸钠(SDS)和 0.1mol/L 的 NaOH 溶液对该实验会有影响。本试剂盒仅供科研使用
2
五、结果计算:
1、标准曲线:y = 3.8457x + 0.0136;x 是标准品浓度(mg/mL),y 是△A。
2、蛋白含量 (mg/g 鲜重)=[(△A-0.0136)÷3.8457×V1]÷(W×V1÷V)×D
=0.26×(△A-0.0136)×D÷W
3、蛋白含量(mg/mL)= [(△A-0.0136)÷3.8457×V1]÷V1×D=0.26×(△A-0.0136)×D
V---提取液体积:1mL;
V1---加入粗提液体积:0.04mL;
W---样本质量:g;
D---稀释倍数,未稀释即为 1。
附:标准曲线制作过程:
1 标准品母液(0.5mg/mL)。
2 把母液用蒸馏水稀释成以下浓度梯度的标准品:0, 0.02, 0.04, 0.06, 0.08, 0.1. mg/mL。
也可根据实际样本来调整标准品浓度。
3 依据测定管加样表操作,根据结果即可制作标准曲线。