本试剂盒仅供科研使用
几丁质酶试剂盒说明书
(货号:WS6450F 分光法 24 样)
一、产品简介:
多种微生物、动物、植物等都可产生几丁质酶,高等植物本身不存在作为真菌细胞壁
组分的几丁质,但当植物受到病原菌感染时,几丁质酶活性迅速提高。因此该酶与
植物对病原微生物的抗性有关,是重要的病程相关蛋白。
几丁质酶主要水解几丁质多聚体中β-1,4-糖苷键,在蜗牛酶的作用下全部水解为 N-
乙酰氨基葡萄糖单体,进一步与铁氰hua钾反应,于 420nm 处检测,进而计算得到几丁
质酶活性大小。
二、试剂盒组分与配制:
试剂名称
规格
保存要求
备注
提取液
液体 30mL×1 瓶
4℃保存
试剂一
液体 7mL×1 瓶
4℃保存
试剂二
粉体 mg×1 瓶
4℃保存
临用甩几下使粉体落入底部,
再加 2.5mL 盐酸充分混匀溶解
后,再加 2.8mL 蒸馏水混匀备用。
试剂三
粉体 mg×1 支
4℃保存
临用甩几下使粉体落入底部,
再加 1.2mL 蒸馏水溶解备用。
试剂四
液体 8mL×1 支
4℃保存
试剂五
液体 5mL×1 瓶
4℃保存
试剂六
粉体 g×1 瓶
4℃保存
临用甩几下使粉体落入底部,
再加 30mL 蒸馏水溶解备用。
标准品
粉剂×1 支
4℃保存
若重新做标曲,则用到该试剂
三、所需的仪器和用品:
分光光光度计、1mL 玻璃比色皿(光径 1cm)、天平、水浴锅、低温离心机、盐酸、蒸馏水。
四、几丁质酶活性测定:
建议正式实验选取 2 个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验
样本和试剂浪费!
1、样本制备:
① 组织样本:称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液,进行冰浴匀浆,于 4℃,12000rpm
离心 10min,取上清置冰上待测。
【注】:若增加样本量,可按照提取液体积(mL) :组织质量(g)为 1:5~10 的比例进行提取
② 真菌样本:先收集细胞到离心管内,离心后弃上清;取 500 万细胞加入 1mL 提取液;
冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 3 ,间隔 7 ,总时间 3min);于 4℃,
12000rpm 离心 10min,取上清置于冰上待测。
【注】:若增加样本量,可按照提取液(mL):细细胞数量(104)为 1:500~1000 的比例进行提取
③ 液体样本:直接检测;若浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测:
① 分光光光度计预热 30min 以上,调节波长至 420nm,蒸馏水调零。
② 在 EP 管中依次加入:
试剂名称(µL)
测定管
对照管
样本
80
煮沸样本
80本试剂盒仅供科研使用
2
试剂一
100
100
试剂二
100
100
混匀,37℃(恒温培养箱)孵育 1.5h,4000rpm 离心 5min,取上清
③ 在 EP 管中依次加入:
上清液
200
200
试剂三
20
20
试剂四
150
150
混匀,37℃孵育 1h
试剂五
100
100
混匀,4000rpm 离心 5min,取上清液待测,
④ 在 EP 管中依次加入:
上清液
360
360
试剂六
480
480
混匀,95-100℃煮沸 10min,取全部液体至 1mL 比色皿中于 420nm
处读取各管吸光值 A,ΔA=A 对照-A 测定(每个样本做一个对照)。
【注】1. 煮沸的样本:于 95-100℃煮沸 10min,使样本里面的酶失去活性。
2. 若ΔA 较小,可以加大样本量(如增至 120µL,则试剂一相应减少),或增加样本取样量
(如 0.2g),则改变后的 V1 和样本 W 需代入公式重新计算。
五、结果计算:
1、标准曲线方程:y = 0.0248x + 0.0024,X 是标准品质量(μg),y 是ΔA。
2、按照样本重量计算:
定义:每克组织每小时分解几丁质产生 1μgN-乙酰氨基葡萄糖的酶量为一个单位。
几丁质酶活(μg/h/g 鲜重)=[(ΔA-0.0024)÷0.0248×1.83]÷(V1÷V×W)÷T=614.9×(ΔA-0.0024)÷W
3、按照蛋白质浓度计算:
定义:每毫克蛋白每小时分解几丁质产生 1μgN-乙酰氨基葡萄糖的酶量为一个单位。
几丁质酶活(μg/h/mg prot)=[(ΔA-0.0024)÷0.0248×1.83]÷(V1×Cpr)÷T=614.9×(ΔA-0.0024)÷Cpr
4、按细胞数量计算:
定义:每 104个细胞每小时分解几丁质产生 1μgN-乙酰氨基葡萄糖的酶量为一个单位。
几丁质酶活(μg/h/104 cell)=[(ΔA-0.0024)÷0.0248×1.83]÷(V1÷V×细胞数量)÷T
=614.9×(ΔA-0.0024)÷细胞数量
5、按照液体体积计算:
定义:每毫升液体每小时分解几丁质产生 1μgN-乙酰氨基葡萄糖的酶量为一个单位。
几丁质酶活(μg/h/mL)=[(ΔA-0.0024)÷0.0248×1.83]÷V1÷T=614.9×(ΔA-0.0024)
V---提取液体积,1mL; V1---样本体积,0.08mL; T---反应时间,1.5h;
W---样本质量,g;
1.83---体积系数;
标准品分子量---221.21;
Cpr---样本蛋白浓度,mg/mL,建议使用本公司的 BCA 蛋白含量检测试剂盒。
附:标准曲线制作过程:
1
制备标准品母液(1mg/mL):标准品临用加 2mL 蒸馏水,即为 1mg/mL。
2 把母液稀释成以下浓度梯度的标准品:0, 0.02, 0.04, 0.06, 0.08, 0.1mg/mL。本试剂盒仅供科研使用
3 依据第④步骤的加样体系:360μL 标准品+480μL 试剂六,混匀,95-100℃煮沸 10min,取全部液
体至 1mL 比色皿中于 420nm 处读取各管吸光值 A,标准品的质量作为横坐标,0 mg/mL 对应的 A
值减去各浓度标准品对应的 A 之差作为纵坐标,即可得出标准曲线。
3