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琼脂糖-蛋白A蛋白G融合蛋白亲和填料
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品牌名称:$brandModel.Title(进口品牌)型号: 原产地:中国大陆 发布时间:2024/8/1 15:47:33更新时间:2024/11/26 14:32:05
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详细内容
1 、产品介绍
PAG NUPharose FF是将重组蛋白A蛋白G融合蛋白(r-PAG,Nuptec NRPA14)键合在琼脂糖凝胶微球上形成的亲和分离介质。与单独的蛋白A或蛋白G分离介质相比,具有更宽广的结合范围,可以与人的所有IgG亚型、IgA、IgE、IgM结合,但不能与小鼠的IgA、IgM和血清白蛋白结合,适合用于鼠IgG单抗的提取和检测。同时融合后的r-PAG降低对pH的依赖,允许在pH5-8进行结合。
2 、产品特点与技术指标
产品名称 | 琼脂糖-蛋白A蛋白G融合蛋白亲和填料 |
基质 | 4%交联琼脂糖 |
配基 | 蛋白 A 蛋白G 融合蛋白, ≥6mg/mL |
粒径范围 a | 45~165 μm |
平均粒径 | ~90 μm |
动态结合载量 b | ≥40 mg h-IgG/mL |
推荐工作流速 c | 60~150 cm/h |
流速与压力 d | >900 cm/h |
使用 pH | pH 3~9(长期),pH 2~10(短期) |
储存与运输 | 20%乙醇,2~8 ℃保存,2~30 ℃运输 |
注:a 90%体积以上的微球在此粒径范围;b DBC10%测试条件为:10%流穿,6min停留时间;c 推荐流速是指该流速可满足大部分柱高下2~6min停留时间的使用条件,并非只能在该流速范围内工作;d 10cm柱高下的测试流速。
3 、PAG 对各类抗体的亲和性
PAG NUPharoseFF对多种哺乳动物抗体的亲和性如下表所示,与单独的蛋白A或蛋白G分离介质相比,蛋白A蛋白G融合蛋白具有更宽广的结合范围。
4 、使用方法参考
4.1 色谱柱装填
以下阐述与层析系统连接时,填料的色谱柱装填方法。
(1)所有需要用到的材料的温度要与色谱操作的温度一样,液体做脱气处理。
(2)填料用量计算:通过沉降定量填料体积,需要的沉降填料体积=柱体积×压缩比(也称压缩因子)。沉降体积是指填料在20%乙醇保存液中自然沉降完-全读取的稳定体积。PAGNUPharoseFF的压缩比为1.15。为使达到装柱比,可通过柱头下压的方法,也可以通过高流速压柱。
(3)填料清洗:将填料悬液充分摇匀后量取相应体积,抽滤除去液体,并用约3倍填料体积的纯化水洗涤,重复3次,以除去保存液。
(4)装柱填料悬液准备:将填料转移到适当的容器中,加入适量的装柱液,制成50~75 v%的装柱填料悬液,使用前搅匀。
(5)装填前准备:在清洗干净的层析柱下端加入装柱液,以除去下垫片及层析柱下端的空气,在柱内保留少量的蒸馏水,拧紧下堵头,调整柱子使其垂直于地面。
(6)装填:将搅匀后的填料悬液一次性缓慢倒入层析柱内(必要时使用装柱器), 为避免引入气泡,应使之沿层析柱内壁自然流下。将所有填料加入后, 用装柱液将装柱 器加满,拧紧装柱器上盖,将柱子与层析系统连接。
(7)压柱:使柱内填料自然沉降(或50~150 cm/h的低流速下沉降),待填料沉降完-全后(填料与液体的界面清晰),去除装柱器,装上上柱头,并将柱头下降至界面处;通过高流速(推荐流速见下表,注意柱压不超过0.3MPa),继续压柱至界面清晰稳定,标记界面稳定时的柱高。停泵,打开柱头上的阀门/堵头,关闭柱底的阀门/堵头,下压柱头至标记位置下方与压缩比对应的位置,旋紧柱头,装柱完成。装柱完成后,需用高流速平衡柱内的填料。
装柱条件 | PAG NUPharose FF |
压缩比 | 1.15 |
装柱流速 | 300~600 cm/h |
4.2 柱效测定和评价
完成装柱后、使用前可通过柱效测定和评价可以确认层析柱装填质量。柱效通常用理论塔板高度(HETP)和非对称因子(As)来评价。柱效测定可以采用丙酮或者NaCl作为样品进行,按照下表配制样品溶液和流动相。
样品 | 1.0%丙酮 | 0.8~1.0 M NaCl |
样品体积 | 1.0%柱体积 | 1.0%柱体积 |
流动相 | 纯水 | 0.4 M NaCl |
流速 | 30 cm/h | 30 cm/h |
检测器 | UV-280 nm | 电导 |
根据UV或者电导率曲线计算理论塔板高度(HETP)、理论塔板数(N)和非对称 因子(As),公式如下:
HETP=L/N
N=5.54(VR/Wh)2 As=a/b
其中:L为柱高;VR为保留体积;Wh为半高峰宽;a为在10%峰高处的个半峰宽;b为在10%峰高处的第二个半峰宽。
一般来说,HETP的数值应小于填料平均粒径的三倍(即HETP/D50<3 ,D50为填料的平均粒径),As应在0.8~1.5之间。
4.3 平衡与上样(Equilibration & Loading)
PB缓冲液(20mM PB+150 mM NaCl,pH=7.0~7.4)是较为常用和通用的缓冲体系。初始的缓冲液称为平衡缓冲液,记为缓冲液A。
在上样前,需用缓冲液A在操作流速下平衡层析柱,该过程通常需要5~10个柱体积的缓冲液A,以电导、pH等检测信号参数不变且与缓冲液A对应为准。
上样量可按“mg目标蛋白/mL填料”来设定,通常为DBC10%的50~80%,例如PAG NUPharose FF产品对人IgG的DBC10%为~40mg/mL,上样量可控制为20~32mg/mL。在条件筛选阶段,也可以降低上样品,观察结合、特异性和洗脱情况。上样前需要对样品进行离心(10000 g以上)、过滤(0.22或0.45μm)处理,以免堵塞色谱柱。
上样后需要3~10个柱体积的缓冲液A再平衡层析柱。
4.4 洗脱与再生(Elution & Regeneration)
*-常用的洗脱方式为pH=2.5~3.0的甘氨-酸、柠檬酸盐或乙酸盐,该条件可基本将抗体完-全洗脱。但该pH较低,可能会使一些抗体失活或聚集,在条件筛选阶段可逐步降低pH,筛选出收率可接受、抗体不失活或不聚焦的pH。也可以将洗脱液收集在弱碱性的缓冲液中,中和至中性,以缩短低pH条件的接触时间。洗脱之后,可用5~10个柱体积的洗脱液对色谱柱进行再生。
4.5 在位清洗(CIP)
多次使用后会有沉淀蛋白,强疏水性蛋白,脂蛋白,脂质体等非特异吸附凝胶上,可以用0.1%去垢剂短时间清洗,如0.1% Triton X-100清洗2个柱体积,立即用结合缓冲液洗5-10个柱体积。也可以用70%乙醇清洗作同样清洗。
4.6 填料保存
填料的初始保存液为20%乙醇,使用过后可继续用20%乙醇保存。保存温度在2~8℃为宜,不可冻存。
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