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重组金黄色-葡萄球菌蛋白A琼脂糖凝胶基球FF
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详细内容
1 、产品介绍
ProANUPharoseFF 是一款抗体亲和填料,其配基 rProtein A 为重组金黄色-葡萄球菌蛋白A,基球 NUPharose 是经典的琼脂糖凝胶基球,FF 为 Fast Flow 的缩写,意味该填料可在高流速下工作。重组金黄色-葡萄球菌蛋白A 配基由大肠杆菌表达,不含动物来源,保留了野生型的 5 个结合域,因而 ProANUPharose FF 的载量远高于野生型蛋白A 填料,对人 IgG 的动 态结合载量高于 40 mg/mL 。ProANUPharoseFF 对人、小鼠、大鼠、兔、牛等等来源的 多种类型和亚型的抗体有亲和作用,可从腹水、血清、细胞培养上清或细胞抽提物中分 离和纯化多种哺乳动物不同亚型的抗体或包含抗体 Fc 片段的基因工程重组蛋白,可满足不同规模的研究或生产需求。
2 、产品特点与技术指标
产品名称 | 重组金黄色-葡萄球菌蛋白A琼脂糖凝胶基球FF |
基质 | 4%交联琼脂糖 |
配基 | 重组金黄色-葡萄球菌蛋白 A , ≥6mg/mL |
粒径范围 a | 45~165 μm |
平均粒径 | ~90 μm |
动态结合载量 b | ≥40 mg h-IgG/mL |
推荐工作流速 c | 60~300 cm/h |
流速与压力 d | >900 cm/h |
使用 pH | 3~10(推荐的工作 pH),3~12(短期稳定) |
化学稳定性 | 在以下溶液中稳定: 常用的水相缓冲液 、 10~100 mmol/L NaOH 、6 mol/L 盐酸胍、70%乙醇。 |
储存与运输 | 20%乙醇,2~8 ℃保存,2~30 ℃运输 |
保质期 | 3 年 |
注:a90%体积以上的微球在此粒径范围;bDBC10%测试条件为:10%流穿,6 min 停留时间;c 推 荐流速是指该流速可满足大部分柱高下 2~6 min 停留时间的使用条件,并非只能在该流速范围内工作;d 10 cm 柱高下的测试流速。
3、抗体亲和层析简介——重组金黄色-葡萄球菌蛋白 A
ProA NUPharose FF 的配基保留了野生型重组金黄色-葡萄球菌蛋白 A 的 E 、D 、A、 B 、C 五个 IgG 结合域。每个结构域有 58 个氨基酸残基,以反平行的三个 α 螺旋排列, 所有结构域都能与 IgG1、IgG2 和 IgG4 的 Fc 区结合,与 IgG3 的亲和力则非常弱。蛋白 A 与 IgG 之间的特异性结合源自非共价相互作用,包括在 IgG 生理条件的溶液状态下的 疏水相互作用、极性相互作用和氢键。蛋白A 主要与 IgG 的 Fc 区结合,不过也有研究 证据表明 D 结合域可以与 Fab 区结合。一般需要降低 pH 将亲和作用破坏后进行洗脱, 例如 pH=3 的甘-氨酸、柠檬酸盐和乙酸盐等。
除了金黄色-葡萄球菌蛋白 A,重组链球菌蛋白 G 也可以与 IgG 结合。下表为蛋
白A 和蛋白G 对不同哺乳动物不同亚型抗体的结合情况。注:-表示不结合;+表示微弱结合;++表示中等结合;+++表示很强结合。
4 、使用方法参考
4.1 色谱柱装填
以下阐述与层析系统连接时,填料的色谱柱装填方法。
(1)所有需要用到的材料的温度要与色谱操作的温度一样,液体做脱气处理。
(2)填料用量计算:通过沉降定量填料体积,需要的沉降填料体积=柱体积×压缩 比(也称压缩因子)。沉降体积是指填料在 20%乙醇保存液中自然沉降完-全读取的稳定 体积。ProANUPharoseFF 的压缩比为 1.15。为使达到装柱比,可通过柱头下压的方法, 也可以通过高流速压柱。
(3)填料清洗:将填料悬液充分摇匀后量取相应体积,抽滤除去液体,并用约 3 倍 填料体积的纯化水洗涤,重复 3 次,以除去保存液。
(4)装柱填料悬液准备:将填料转移到适当的容器中,加入适量的装柱液,制成 50~75 v%的装柱填料悬液,使用前搅匀。
(5)装填前准备:在清洗干净的层析柱下端加入装柱液,以除去下垫片及层析柱下 端的空气,在柱内保留少量的蒸馏水,拧紧下堵头,调整柱子使其垂直于地面。
(6)装填:将搅匀后的填料悬液一次性缓慢倒入层析柱内(必要时使用装柱器), 为避免引入气泡,应使之沿层析柱内壁自然流下。将所有填料加入后, 用装柱液将装柱 器加满,拧紧装柱器上盖,将柱子与层析系统连接。
(7)压柱:使柱内填料自然沉降(或 50~150 cm/h 的低流速下沉降),待填料沉降 完-全后(填料与液体的界面清晰),去除装柱器,装上上柱头,并将柱头下降至界面处; 通过高流速(推荐流速见下表,注意柱压不超过 0.3 MPa),继续压柱至界面清晰稳定, 标记界面稳定时的柱高。停泵, 打开柱头上的阀门/堵头,关闭柱底的阀门/堵头,下压柱 头至标记位置下方与压缩比对应的位置,旋紧柱头,装柱完成。装柱完成后,需用高流 速平衡柱内的填料。
装柱条件 | ProANUPharose FF |
压缩比 | 1.15 |
装柱流速 | 300~600 cm/h |
4.2 柱效测定和评价
完成装柱后、使用前可通过柱效测定和评价可以确认层析柱装填质量。柱效通常用 理论塔板高度(HETP)和非对称因子(As)来评价。柱效测定可以采用丙酮或者 NaCl 作为样品进行,按照下表配制样品溶液和流动相。
样品 | 1.0%丙酮 | 0.8~1.0 M NaCl |
样品体积 | 1.0%柱体积 | 1.0%柱体积 |
流动相 | 纯水 | 0.4 M NaCl |
流速 | 30 cm/h | 30 cm/h |
检测器 | UV-280 nm | 电导 |
根据 UV 或者电导率曲线计算理论塔板高度(HETP)、理论塔板数(N)和非对称 因子(As),公式如下:
HETP=L/N
N=5.54(VR/Wh)2
As=a/b
其中:L 为柱高;VR 为保留体积;Wh 为半高峰宽;a 为在 10%峰高处的个半峰宽; b 为在 10%峰高处的第二个半峰宽。
一般来说,HETP 的数值应小于填料平均粒径的三倍(即 HETP/D50<3 ,D50 为填 料的平均粒径),As 应在 0.8~1.5 之间。
4.3 平衡与上样(Equilibration & Loading)
PB 缓冲液(20 mM PB+150 mM NaCl,pH=7.0~7.4)是较为常用和通用的缓冲体系。 初始的缓冲液称为平衡缓冲液,记为缓冲液 A。
在上样前,需用缓冲液 A 在操作流速下平衡层析柱,该过程通常需要 5~10 个柱体 积的缓冲液 A,以电导、pH 等检测信号参数不变且与缓冲液 A 对应为准。
上样量可按“mg 目标蛋白/mL 填料”来设定,通常为 DBC10% 的 50~80%,例如 ProA NUPharose FF 产品对人 IgG 的 DBC10%为~40 mg/mL,上样量可控制为 20~32 mg/mL 。 在条件筛选阶段,也可以降低上样品,观察结合、特异性和洗脱情况。上样前需要对样 品进行离心(10000 g 以上)、过滤(0.22 或 0.45 μm)处理,以免堵塞色谱柱。
上样后需要 3~10 个柱体积的缓冲液 A 再平衡层析柱。
4.5 在位清洗(CIP)
若发生柱压升高,或有蛋白与填料强烈结合无法洗脱,或有沉淀、变性蛋白时,需 要对填料进行在位清洗,可采用以下方法去除杂质,反向清洗效果更佳。
CIP 过程 | 目的 |
6 mol/L 盐酸胍,2 CV;缓冲液 A ,5 CV。 | 去除沉淀、变性蛋白 |
0.01~0.1 M NaOH ,接触 10~15 min;缓冲液 A ,5 CV。 | 去除沉淀、变性蛋白 |
0.1%非离子型表面活性剂,2 CV;缓冲液 A ,5 CV 。或 70%乙醇,3~5 CV;缓冲液 A ,5 CV。 | 去除疏水性蛋白 |
4.6 填料保存
填料的初始保存液为 20%乙醇,使用过后可继续用20%乙醇保存。保存温度在 2~8℃ 为宜,不可冻存。
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