小动物血管线栓：大鼠血管线栓，小鼠血管线栓
价格：￥电议
品牌名称：$brandModel.Title(进口品牌)型号：S100 原产地：中国大陆 发布时间：2022/11/14 22:02:06更新时间：2024/11/18 9:40:02
产品摘要：小动物血管线栓采用柔韧度非常好的进口单丝尼龙线，经显微操作，头端均匀包被硅胶，其表面光滑，粗细一致，易进入颅内又不至于刺破血管，使用本产品可大大提高模型制备的成功率，及脑缺血范围的稳定性。
产品完善度： 访问次数：175
企业档案
会员类型：会员
已获得易推广信誉 等级评定
41成长值
(0 -40)基础信誉积累，可浏览访问
(41-90)良好信誉积累，可接洽商谈
(91+ )优质信誉积累，可持续信赖
易推广会员：5年
工商认证 【已认证】
最后认证时间：
注册号：**** 【已认证】
法人代表： 【已认证】
企业类型：个体商户 【已认证】
注册资金：人民币***万 【已认证】
产品数：1550
参观次数：836597
详细内容
大鼠/小鼠脑缺血线栓：动物大脑中动脉栓塞（middle cerebral artery occlusion, MCAO）模型是目使用广泛的、研究局灶性脑缺血再灌注损伤的理想模型。线栓法是制作MCAO模型常用方法，MCAO线栓（MCAO Monofilaments, MCAO Sutures）则是制备大鼠、小鼠（或其它实验动物）这一模型非常关键的实验材料，本产品采用柔韧度非常好的进口单丝尼龙线，经显微操作，头端均匀包被硅胶，其表面光滑，粗细一致，易进入颅内又不至于刺破血管，使用本产品可大大提高模型制备的成功率，及脑缺血范围的稳定性。
MCAO线拴可以将脑梗塞体积标准差减少至很小，动物的脑血流在插入线拴时会有断崖式下降；拔出线拴后，血流会很快恢复，并避免蛛网膜下腔出血。
硅胶包被线拴要远好于无包被的圆头线拴，其结果更为稳定，即使对于没有经验的实验者来说也是如此。
MCAO脑缺血栓线的产品特点：
● 硅胶材质包被：目被全球公认的制作脑缺血模型的理想材料。
● 包被均匀：同规格线栓间直径误差±0.02 mm。
● 线体软硬适中， 插线轻松且不会导致颅底出血。
● 线栓带有明显的指示标记，对使用线栓造模的初学者具有很好的指导作用。
● 成模率高，梗死灶大小均一。
● 规格齐全，适合不同体重的小鼠、大鼠。
● 出厂已经过紫外灭菌，打开包装即可直接使用。
动物大脑中动脉栓塞（middle cerebral artery occlusion, MCAO）模型是目使用广泛的、研究局灶性脑缺血再灌注损伤的理想模型。线栓法是制作MCAO模型常用方法，MCAO线栓（MCAO Monofilaments, MCAO Sutures）则是制备大鼠、小鼠（或其它实验动物）这一模型非常关键的实验材料，本产品采用柔韧度非常好的进口单丝尼龙线，经显微操作，头端均匀包被硅胶，其表面光滑，粗细一致，易进入颅内又不至于刺破血管，使用本产品可大大提高模型制备的成功率，及脑缺血范围的稳定性。
对于MCAO模型来说，主要有两种线拴，无包被的火焰熔烫圆头线拴及硅胶包被线拴。研究表明(Tsuchiya et al. 2003)，无包被的圆头线拴在MCAO实验过程中可能导致高达40%的蛛网膜下腔出血，而其标准差可能比平均值的50%还要大。另一项技术文章表明(Shimamura et al. 2006a)，硅胶包被线拴要远好于无包被的圆头线拴，其结果更为稳定，即使对于没有经验的实验者来说也是如此。而多聚赖氨酸包被的线拴只能增加死亡率，不能减少梗赛体积的变异程度(Huang et al. 1998)。
产品特点：
● 硅胶材质包被：目被全球公认的制作脑缺血模型的理想材料。
● 包被均匀：同规格线栓间直径误差±0.02 mm。
● 线体软硬适中， 插线轻松且不会导致颅底出血。
● 线栓带有明显的指示标记，对使用线栓造模的初学者具有很好的指导作用。
● 成模率高，梗死灶大小均一。
● 规格齐全，适合不同体重的小鼠、大鼠。
● 出厂已经过紫外灭菌，打开包装即可直接使用。
产品型号及订购信息：
我们除了自己可以加工、定制硅胶包被的线栓，还可以提供Doccol MCAO线拴（美国进口线栓）
Doccol MCAO线拴全部为硅胶包被，圆润、柔软、包被均匀，即使在没有激光多普勒实时检测的情况，也不会将血管戳破。使用自制的硅胶包被的线拴，大鼠(Schmid-Elsaesser et al. 1998)及小鼠(Shah et al. 2006)的脑梗塞体积的标准差均在30%左右。而使用Doccol MCAO线拴可以得到更好的结果。对于大鼠MCAO模型来说，使用Doccol MCAO线拴得到的结果的标准差可达10%-20% （Ruscher et al.2012；Ishizaka et al.2013；Sakata et al.2012；Candelario-Jalil et al. 2008；Khan et al. 2006；Liu et al. 2006；Shimamura et al. 2006b；Solaroglu et al. 2006；Tsubokawa et al. 2007；Tsubokawa et al. 2006a；Tsubokawa et al. 2006b)。对于小鼠来说，使用Doccol MCAO线拴得到的结果的标准差可达5%-10%(Chen et al.2014; Bae et al.2013; Jin et al.2011; Gu et al.2012; Kleinschnitz et al. 2007; Maysami et al. 2008; Pignataro et al. 2007b; Pignataro et al. 2007c)。
常用的主要型号：
主要应用文献：
产品特点：
● 硅胶材质包被：目被全球公认的制作脑缺血模型的理想材料。
● 包被均匀：同规格线栓间直径误差±0.02 mm。
● 线体软硬适中， 插线轻松且不会导致颅底出血。
● 线栓带有明显的指示标记，对使用线栓造模的初学者具有很好的指导作用。
● 成模率高，梗死灶大小均一。
● 规格齐全，适合不同体重的小鼠、大鼠。
● 出厂已经过紫外灭菌，打开包装即可直接使用。
产品型号及订购信息：
我们除了自己可以加工、定制硅胶包被的线栓，还可以提供Doccol MCAO线拴（美国进口线栓）
Doccol MCAO线拴全部为硅胶包被，圆润、柔软、包被均匀，即使在没有激光多普勒实时检测的情况，也不会将血管戳破。使用自制的硅胶包被的线拴，大鼠(Schmid-Elsaesser et al. 1998)及小鼠(Shah et al. 2006)的脑梗塞体积的标准差均在30%左右。而使用Doccol MCAO线拴可以得到更好的结果。对于大鼠MCAO模型来说，使用Doccol MCAO线拴得到的结果的标准差可达10%-20% （Ruscher et al.2012；Ishizaka et al.2013；Sakata et al.2012；Candelario-Jalil et al. 2008；Khan et al. 2006；Liu et al. 2006；Shimamura et al. 2006b；Solaroglu et al. 2006；Tsubokawa et al. 2007；Tsubokawa et al. 2006a；Tsubokawa et al. 2006b)。对于小鼠来说，使用Doccol MCAO线拴得到的结果的标准差可达5%-10%(Chen et al.2014; Bae et al.2013; Jin et al.2011; Gu et al.2012; Kleinschnitz et al. 2007; Maysami et al. 2008; Pignataro et al. 2007b; Pignataro et al. 2007c)。
常用的主要型号：
| 种属 | 体重（g） | 推荐型号（可重复用） | 线号 | 外径（mm） | 包被（mm） |
| 小鼠 | 15-20 | 701956PK5Re | 7-0 | 0.19 | 5-6 |
| 20-25 | 602156PK5Re | 6-0 | 0.21 | 5-6 | |
| 25-30 | 602356PK5Re | 6-0 | 0.23 | 5-6 | |
| 30-35 | 602356PK5Re | 6-0 | 0.23 | 5-6 | |
| 大鼠 | <200 | 503356PK5Re | 5-0 | 0.33 | 5-6 |
| 200-250 | 403556PK5Re | 4-0 | 0.35 | 5-6 | |
| 250-280 | 403756PK5Re | 4-0 | 0.37 | 5-6 | |
| 280-330 | 403956PK5Re | 4-0 | 0.39 | 5-6 | |
| 330-400 | 404156PK5Re | 4-0 | 0.41 | 5-6 | |
| >400 | 404356PK5Re | 4-0 | 0.43 | 5-6 |
主要应用文献：
1. Bae ON, Serfozo K, Baek SH, et al. (2013) Safety ａnd efficacy evaluation of carnosine, an endogenous neuroprotective agent for ischemic stroke. Stroke 44(1):205-12.
2. Candelario-Jalil E, Munoz E, Fiebich BL. (2008) Detrimental effects of tropisetron on permanent ischemic stroke in the rat. BMC Neurosci 9:19
3. Chen HZ, Guo S, Li ZZ, et al. (2014) A critical role for interferon regulatory factor 9 in cerebral ischemic stroke.J Neurosci.34(36):11897-912.
4. Huang J, Kim LJ, Poisik A, Pinsky DJ, Connolly ES, Jr. (1998) Does poly-L-lysine coating of the middle cerebral artery occlusion suture improve infarct consistency in a murine model? J Stroke Cerebrovasc Dis 7:296-301
5. Gu L, Xiong X, Zhang H, et al. (2012) Distinctive Effects of T Cell Subsets in Neuronal Injury Induced by Cocultured Splenocytes In Vitro ａnd by In Vivo Stroke in Mice. Stroke 43:1941-1946.
6. Ishizaka S, Horie N, Satoh K, et al. (2013) Intra-arterial Cell Transplantation Provides Timing-Dependent Cell Distribution ａnd Functional Recovery After Stroke. Stroke 44:720-726.
7. Jin R, Song Z, Yu S, et al. (2011) Phosphatidylinositol-3-kinase gamma plays a central role in blood-brain barrier dysfunction in acute experimental stroke.Stroke 42(7):2033-44.
8. Khan M, Jatana M, Elango C, Paintlia AS, Singh AK, Singh I. (2006) Cerebrovascular protection by various nitric oxide donors in rats after experimental stroke. Nitric Oxide 15:114-124
9. Kleinschnitz C, Pozgajova M, Pham M, Bendszus M, Nieswandt B, Stoll G. (2007) Targeting platelets in acute experimental stroke: impact of glycoprotein Ib, VI, ａnd IIb/IIIa blockade on infarct size, functional outcome, ａnd intracranial bleeding. Circulation 115:2323-2330
10. Koizumi J, Yoshida Y, Nakazawa T, Ooneda G. (1986) Experimental studies of ischemic brain edema, I: a new experimental model of cerebral embolism in rats in which recirculation can be introduced in the ischemic area. Jpn J Stroke 8:1-8
11. Liu S, Liu W, Ding W, Miyake M, Rosenberg GA, Liu KJ. (2006) Electron paramagnetic resonance-guided normobaric hyperoxia treatment protects the brain by maintaining penumbral oxygenation in a rat model of transient focal cerebral ischemia. J Cereb Blood Flow Metab 26:1274-1284
12. Longa EZ, Weinstein PR, Carlson S, Cummins R. (1989) Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke 20:84-91
13. Maysami S, Lan JQ, Minami M, Simon RP. (2008) Proliferating progenitor cells: a required cellular element for induction of ischemic tolerance in the brain. J Cereb Blood Flow Metab 28:1104-1113
14. Pignataro G, Simon RP, Boison D. (2007a) Transgenic overexpression of adenosine kinase aggravates cell death in ischemia. J Cereb Blood Flow Metab 27:1-5
15. Pignataro G, Simon RP, Xiong ZG. (2007b) Prolonged activation of ASIC1a ａnd the time window for neuroprotection in cerebral ischaemia. Brain 130:151-158
16. Pignataro G, Studer FE, Wilz A, Simon RP, Boison D. (2007c) Neuroprotection in ischemic mouse brain induced by stem cell-derived brain implants. J Cereb Blood Flow Metab 27:919-927
17. Ruscher K, Kuric E, Wieloch T, et al. (2012) Levodopa Treatment Improves Functional Recovery After Experimental Stroke. Stroke 43:507-513.
18. Sakata H, et al. (2012) Minocycline-Preconditioned Neural Stem Cells Enhance Neuroprotection after Ischemic Stroke in Rats. J Neurosci. 32(10):3462–3473.
19 Schmid-Elsaesser R, Zausinger S, Hungerhuber E, Baethmann A, Reulen HJ. (1998) A critical reevaluation of the intraluminal thread model of focal cerebral ischemia: evidence of inadvertent premature reperfusion ａnd subarachnoid hemorrhage in rats by laser-Doppler flowmetry. Stroke 29:2162-2170
20. Shah ZA, Namiranian K, Klaus J, Kibler K, Dore S. (2006) Use of an optimized transient occlusion of the middle cerebral artery protocol for the mouse stroke model. J Stroke Cerebrovasc Dis 15:133-138
21. Shimamura N, Matchett G, Tsubokawa T, Ohkuma H, Zhang J. (2006a) Comparison of silicon-coated nylon suture to plain nylon suture in the rat middle cerebral artery occlusion model. J Neurosci Methods 156:161-165
22. Shimamura N, Matchett G, Yatsushige H, Calvert JW, Ohkuma H, Zhang J. (2006b) Inhibition of integrin alphavbeta3 ameliorates focal cerebral ischemic damage in the rat middle cerebral artery occlusion model. Stroke 37:1902-1909
23. Solaroglu I, Tsubokawa T, Cahill J, Zhang JH. (2006) Anti-apoptotic effect of granulocyte-colony stimulating factor after focal cerebral ischemia in the rat. Neuroscience 143:965-974
24. Tsubokawa T, Jadhav V, Solaroglu I, Shiokawa Y, Konishi Y, Zhang JH. (2007) Lecithinized superoxide dismutase improves outcomes ａnd attenuates focal cerebral ischemic injury via antiapoptotic mechanisms in rats. Stroke 38:1057-1062
25. Tsubokawa T, Solaroglu I, Yatsushige H, Cahill J, Yata K, Zhang JH. (2006a) Cathepsin ａnd calpain inhibitor E64d attenuates matrix metalloproteinase-9 activity after focal cerebral ischemia in rats. Stroke 37:1888-1894
26. Tsubokawa T, Yamaguchi-Okada M, Calvert JW, Solaroglu I, Shimamura N, Yata K, Zhang JH. (2006b) Neurovascular ａnd neuronal protection by E64d after focal cerebral ischemia in rats. J Neurosci Res 84:832-840
27. Tsuchiya D, Hong S, Kayama T, Panter SS, Weinstein PR. (2003) Effect of suture size and carotid clip application upon blood flow ａnd infarct volume after permanent ａnd temporary middle cerebral artery occlusion in mice. Brain Res 970:131-139
MCAO模型脑缺血手术中常用的手术器械，可供参考：
手术显微镜（小鼠使用，大鼠可以不用）
冷光源
动物体温维持仪
剃毛器
手术剪 12cm 直
眼科镊 10cm 弯 2把
显微镊 11cm 或者 14cm 弯
显微剪 12cm 直（剪血管使用）
切线剪
大小鼠撑开器 8cm
血管夹 4cm
动脉夹 1.5cm 2个
持针钳
缝合针（或带针缝合线）
缝合线
还可以根据需求，选择小动物气体麻醉机：
小动物气体麻醉机
动物保温系统
动物体温维持仪（电热型）对手术中的动物和术后恢复的动物进行保温，并可进行动物体温测量。
敬请来电咨询！
MCAO模型脑缺血手术中常用的手术器械，可供参考：
手术显微镜（小鼠使用，大鼠可以不用）
冷光源
动物体温维持仪
剃毛器
手术剪 12cm 直
眼科镊 10cm 弯 2把
显微镊 11cm 或者 14cm 弯
显微剪 12cm 直（剪血管使用）
切线剪
大小鼠撑开器 8cm
血管夹 4cm
动脉夹 1.5cm 2个
持针钳
缝合针（或带针缝合线）
缝合线
还可以根据需求，选择小动物气体麻醉机：
小动物气体麻醉机
动物保温系统
动物体温维持仪（电热型）对手术中的动物和术后恢复的动物进行保温，并可进行动物体温测量。
敬请来电咨询！
您想了解更多详细资料吗？
请与我们联系：
TEL ： ， 18502129044
QQ ：3007536621
Mail： yuyan0317@126.com
敬请来电咨询！
